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¿Cuál es la ortografía correcta para este agar?

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No pude deletrear el agar [gonolina-urolina] que escuché ayer. Mi ortografía es tan incorrecta que no pude encontrarla en Google.

¿Cuál es la ortografía correcta para este agar?


La primera palabra está bien, hay agar llamado Gonoline, la segunda es probablemente Euroline y hay un agar con esta palabra también (Liver IgG Euroline).

Los encontré a ambos en el sitio italiano, probablemente no sean uno, sino dos agares.


Mirando sus dos preguntas juntas, creo que se refiere a medios de gonolina, seguidos de agar sangre. Para ser honesto, siento que esta pregunta estaría fuera de tema. Puede que se esté refiriendo a un agar sangre específico, como el agar chocolate, pero eso sería una especulación salvaje.

Los medios de gonolina se utilizan a menudo para Neisseriaceae, por lo que tal vez esté mirando específicamente a la gonorrea.


Medio

Busque instrucción más que inspiración Como la mayoría de las redes sociales, TikTok es una plataforma en la que las personas quieren mostrar quiénes son: la mejor y más emocionante versión de sí mismos.

A menudo se la veía sentada contra la pared trasera de la Sala de Situación cerca de Pence en fotos publicadas en las redes sociales.

Moreno escribió que podría enfrentar entre 3 y 4 años de prisión "por simplemente publicar en las redes sociales".

La campaña de Biden dijo que los anuncios son parte de 65 millones de dólares gastados esta semana en medios pagados, incluida la televisión, la radio y la publicidad impresa.

El 39% de los comerciantes planea vender productos en mercados digitales, y el 31% pondrá los productos a disposición para su compra a través de aplicaciones de redes sociales, según PayPal.

Mientras los frijoles se enfrían y secan, derrita la mantequilla en una sartén a fuego medio.

Coloque las chalotas en rodajas finas en un tazón mediano y vierta suero de leche para cubrir.

Caliente el ron en una sartén pequeña a fuego medio hasta que se reduzca a la mitad.

Mientras la carne de cerdo descansa, caliente una sartén grande de fondo grueso a fuego medio-alto.

Termine la salsa poniendo la fuente para asar en la estufa a fuego medio-alto.

El tono medio expresa calidez, emoción y las cualidades del corazón.

Varían mucho en tamaño, siendo a veces tan pequeños que parecen meros puntos de luz con objetivos de mediana potencia.

En la actualidad, este medio es el papel moneda depreciado, como en el caso de los billetes del Reichsbank, en casi un 30 por ciento.

"Di que sí rápidamente", gritó, y la fuerza de su voluntad y pasión vibraron en ella a través del medio que había establecido.

Y un dolor desenfrenado en mi cabeza, secundado por una herida de tamaño mediano en el cuero cabelludo, no fue un acceso de optimismo en ese momento.


Diferencias entre agar y gelatina

Hemos categorizado las diferencias en varios factores distintos, desde su composición hasta los beneficios para la salud. Lo que nos lleva a nuestra próxima gran pregunta, ¿de dónde provienen exactamente el agar agar y la gelatina?

Fuente

Fuente de agar agar

El agar agar proviene de la pared celular de una especie de algas (algas rojas) que se encuentran principalmente en la región del Pacífico y la costa de California. Puedes encontrarlos tanto en cocinas como en laboratorios. Se considera al menos 7-8 veces más fuerte que la gelatina debido a que tiene un origen vegetal.

Fuente de gelatina

La gelatina es la alternativa no vegetariana del agar agar. Los fabricantes utilizan el proceso ácido y alcalino para obtener gelatina de los colágenos de la piel, los tendones y los huesos de los animales. Recientemente, otro tipo de gelatina ha ganado cierta popularidad que se deriva de peces e insectos.

Composición

Composición del agar agar

El agar consta de dos tipos de carbohidratos, a saber, agarosa (70-75%) y agarosectina (30-25%). Tiende a fundirse a 85 ° C (358 K).

La composición del agar agar juega un papel importante en su propiedad de fácil fusión y estabilidad del gel. Se puede moler hasta obtener un polvo fino. Por lo tanto, puede encontrarlos comúnmente en el mercado en forma de polvos y tiras. Es blanco y bastante translúcido.

Composición de la gelatina

Los péptidos y las proteínas son los principales componentes de la gelatina. Se obtienen del colágeno de huesos de animales y otros tejidos conectivos a través de una serie de reacciones químicas, conocidas como electrólisis parcial.

Debido a su composición, se funde en cualquier líquido con una temperatura de 35 ° a 40 ° C. Pierde su fuerza al exponerse a una temperatura superior a 100 ° C (373,15 ° K).

La gelatina que se encuentra en el mercado es mucho más granular que el agar agar. Los encontrará principalmente en paquetes de polvos o láminas. Es incoloro, inodoro y translúcido.

Usos de la gelatina

La gelatina se utiliza para elaborar diversos tipos de alimentos. Ejemplos comunes son malvaviscos, mermeladas, ositos de goma, bagatelas, postres helados, bizcochos y otros postres gelatinosos. La gelatina también se usa para hacer dulces como coberturas de gelatina para pasteles.

Las fábricas de productos lácteos a gran escala también utilizan gelatina para preparar productos como margarina, mayonesa y yogur. Los usos técnicos de la gelatina incluyen la fabricación de cosméticos, películas fotográficas, papel de lija y cápsulas de medicamentos.

Usos del agar

Dado que tanto la gelatina como el agar agar son agentes gelificantes, la mayoría de sus usos con fines culinarios son comunes entre sí.

Al igual que la gelatina, el agar agar se puede utilizar para hacer postres semisólidos como jaleas, natillas, budines, tartas de queso sin hornear, etc. hecho con agar agar.

Puede usar agar agar para hacer rellenos cremosos para bizcochos o pasteles o usarlo como espesante para salsas de postres. También se utilizan en los campos de la microbiología, la odontología, etc. Mucha gente lo utiliza también como laxante.


¿Sabías?

Si cree que ve una conexión entre "inocular" y "ocular" ("de o relacionado con el ojo"), no se equivoca: ambas palabras se remontan a "oculus", la palabra latina para "ojo". Pero, ¿qué tiene que ver el ojo con la inoculación? Nuestra respuesta se encuentra en el uso original en inglés de "inoculate" en inglés medio: "insertar un capullo en una planta". latín óculo a veces se aplicaba a cosas que parecían ojos, y una de esas cosas era el capullo de una planta. "Inocular" se aplicó posteriormente a otras formas de injerto o implantación, incluida la introducción de vacunas como preventivo contra enfermedades.


Serratia Marcescens como organismo trazador

Serratia marcescens se utilizó como organismo marcador durante muchos años hasta que finalmente se reveló su patogenicidad. En la Primera Guerra Mundial, donde a menudo se llevaron a cabo experimentos médicos controlados en soldados, los mecanismos de infección bacteriana a través de la boca y el sistema gastrointestinal pudieron estudiarse gracias a la coloración roja distintiva proporcionada por S. marcescens. Los investigadores médicos colocarían S. marcescens en las encías antes de la cirugía dental para ver si las bacterias pueden ingresar al torrente sanguíneo, por ejemplo. Lo más famoso es que el ejército de los EE. UU. Serratia marcescens para mostrar los resultados de una posible guerra biológica y lanzó un gran número de Serratia en sistemas de metro, instalaciones gubernamentales y militares y poblaciones urbanas enteras. Esto provocó una infección y un pequeño número de S. marcescens muertes relacionadas con infecciones. La publicidad en la prensa de los casos judiciales subsiguientes que comenzaron a fines de la década de 1960 llegó a audiencias globales.


Consideraciones de seguridad adicionales(6)

  • Al revolver la solución de caldo, se debe prestar especial atención al comenzar la escala de agitación en un ajuste bajo y agregar más velocidad desde allí.
  • Al calentar el caldo, asegúrese de tapar el frasco de tal manera que no se preste a hervir, pero para evitar derrames.
  • Al verter el caldo, asegúrese de llenar la placa de Petri sin quemarse. Además, es importante en este proceso asegurarse de que la placa de Petri se cubra inmediatamente para permitir que la sustancia se enfríe proporcionalmente.
  • Una vez que las placas de Petri han sido expuestas o inoculadas, los estudiantes no deben volver a abrirlas.

El método de la placa de rayas requiere que se reduzca el número de organismos en los inóculos. El procedimiento incluye una técnica de dilución que requiere esparcir un asa de cultivo sobre la superficie de la placa de agar.

Esto es para asegurarse de que las células individuales se deshagan en la superficie del medio de agar para que tenga lugar la separación de las diferentes especies. Este procedimiento también se denomina método de aislamiento cualitativo rápido. (2, 3 y 4)

Imagen 3: Inocular una placa mediante la técnica de la placa rayada.

Fuente de imagen: slideplayer.com

Imagen 4: Un aislado bacteriano puro utilizando la técnica de placa de rayas.

Fuente de imagen: researchgate.net

Imagen 5: El resultado real de una técnica de placa de racha.

Fuente de imagen:slideplayer.com


Efectos secundarios

Niños: Agar es POSIBLEMENTE SEGURO cuando se administra por vía oral a bebés con ictericia neonatal hasta por 7 días.

Embarazo y lactancia: No hay suficiente información confiable para saber si el agar es seguro de usar durante el embarazo o la lactancia. Manténgase en el lado seguro y evite su uso.

Bloqueo intestinal (obstrucción): El agar puede empeorar la obstrucción intestinal, especialmente si no se toma con suficiente agua u otro líquido. Obtenga asesoramiento médico antes de tomar agar si tiene una obstrucción intestinal.

Dificultad al tragar: El agar puede hincharse y bloquear el tubo digestivo (esófago) si no se toma con suficiente agua u otro líquido. Esto puede ser especialmente peligroso para alguien que tiene problemas para tragar. Consulte con un médico antes de tomar agar si tiene problemas para tragar.


Prueba de hidrólisis de almidón y # 8211 Principio, procedimiento, usos e interpretación

Muchas bacterias producen enzimas extracelulares que se utilizan para catalizar reacciones químicas fuera de la célula. De esta manera, las fuentes de nutrientes, como el almidón, que son demasiado grandes para ser absorbidas a través de la membrana celular, pueden descomponerse en moléculas más pequeñas y transportarse a la célula por difusión.

En la prueba de hidrólisis del almidón, las bacterias de prueba se cultivan en placas de agar que contienen almidón. Si las bacterias tienen la capacidad de hidrolizar el almidón, lo hace en el medio, particularmente en las áreas que rodean su crecimiento, mientras que el resto del área de la placa todavía contiene almidón no hidrolizado. Dado que no se produce ningún cambio de color en el medio cuando los organismos hidrolizan el almidón, se agrega una solución de yodo como indicador a la placa después de la incubación. Mientras que el almidón no hidrolizado forma un color azul oscuro con el yodo, sus productos finales hidrolizados no adquieren ese color azul oscuro con el yodo.

En consecuencia, se forman zonas claras y transparentes alrededor de las colonias que hidrolizan el almidón, mientras que el resto de la placa muestra una coloración azul oscura a medida que el yodo forma el complejo coloreado con el almidón.

Agar almidón es un medio nutritivo simple con almidón agregado. El extracto de carne y la digestión pancreática de gelatina proporcionan nitrógeno, vitaminas, carbono y aminoácidos. El agar es el agente solidificante y el almidón es el carbohidrato.

Composición:

Digerido péptico de tejido animal 5.000, Cloruro de sodio 5.000, Extracto de levadura 1.500, Extracto de ternera 1.500 Almidón, soluble 2.000 Agar 15.000 pH final (a 25 ° C) 7,4 ± 0,2


¿Cuál es la ortografía correcta para este agar? - biología

de Rafael Armisen y Fernando Galatas
Hispanagar, S.A., Polígono Industrial de Villalonquejar
Calle L & oacutepez Bravo & quotA & quot, 09080 Burgos, España

Según la Farmacopea de los Estados Unidos, el agar se puede definir como un coloide hidrófilo extraído de ciertas algas marinas de la clase Rhodophyceae. Es insoluble en agua fría pero soluble en agua hirviendo. Una solución al 1,5% es transparente y cuando se enfría a 34-43 ° C forma un gel firme que no se funde de nuevo por debajo de 85 ° C ° 176 ° C. Es una mezcla de polisacáridos cuyo monómero básico es la galactosa. Estos polisacáridos pueden sulfatarse en grados muy variables pero en menor grado que en el carragenano. Por esta razón el contenido de cenizas está por debajo del carragenano, furcelleran (agar danés) y otros. Un contenido máximo de cenizas del 5% es aceptable para el agar, aunque normalmente se mantiene entre el 2,5% y el 4%.

El agar es el ficocoloide de origen más antiguo. En Japón, se considera que el agar fue descubierto por Minoya Tarozaemon en 1658 y un monumento en Shimizu-mura conmemora la primera vez que se fabricó. Originalmente, e incluso en la actualidad, se elaboraba y vendía como extracto en solución (caliente) o en forma de gel (frío), para ser utilizado rápidamente en áreas cercanas a las fábricas, el producto entonces se conocía como tokoroten. Su industrialización como producto seco y estable se inició a principios del siglo XVIII y desde entonces se le ha denominado kanten. La palabra & quotagar-agar & quot, sin embargo, tiene un origen malayo y agar es el término más comúnmente aceptado, aunque en los países de habla francesa y portuguesa también se le llama gelosa.

Se cuenta una leyenda japonesa sobre la primera preparación de agar:

La producción de agar mediante técnicas modernas de congelación industrial fue iniciada en California por Matsuoka, quien registró sus patentes en 1921 y 1922 en los Estados Unidos. El actual método de fabricación por congelación es el clásico y deriva del americano que fue desarrollado en California durante los años previos a la Segunda Guerra Mundial por H.H. Selby y C.K. Tseng (Selby, 1954 Selby y Wynne, 1973 Tseng, 1946). Este trabajo fue apoyado por el Gobierno estadounidense que quería que el país fuera autosuficiente en sus necesidades estratégicas, especialmente en lo que respecta a los medios de cultivo bacteriológicos.

Aparte de la producción estadounidense antes mencionada, prácticamente el único productor de este ficocoloide hasta la Segunda Guerra Mundial fue la industria japonesa, que tiene una estructura industrial muy tradicional basada en numerosas pequeñas fábricas (unas 400 fábricas operadas simultáneamente). Estas fábricas eran operadas por familias, producían una calidad no estandarizada y tenían una alta tasa de empleo ya que la producción no estaba mecanizada. Por esta razón, ya pesar de la posterior instalación de algunas fábricas de tamaño mediano a pequeño, sólo en tiempos recientes Japón ha operado plantas industriales modernas.

Durante la Segunda Guerra Mundial la escasez de agar disponible actuó como incentivo para aquellos países con recursos costeros de Gelidium sesquipedale, que es muy similar al Gelidium pacificum utilizado por la industria japonesa. Así, en Portugal, Loureiro inició la industria del agar en Oporto, mientras que al mismo tiempo J. Mejias y F. Cabrero, en España, iniciaron los estudios que llevaron al establecimiento de la importante industria del agar ibérico. Otros países europeos que no tenían algas agarofitas intentaron preparar sustitutos del agar a partir de otros extractos de algas (ver Apéndice).

Las diferentes algas utilizadas como materia prima en la producción de agar han dado lugar a productos con diferente comportamiento, aunque todas pueden incluirse en la definición general de agar. Por ello, cuando se menciona el agar, se acostumbra indicar su materia prima original ya que esto puede afectar sus aplicaciones (Figura 1). De ahí que hablamos de agar Gelidium, agar Gracilaria, agar Pterocladia, etc. Para describir con mayor precisión el producto, es habitual mencionar el origen de las algas, ya que el agar Gracilaria de Chile tiene propiedades diferentes al agar Gracilaria de Argentina y el agar Gelidium de España se diferencia del agar Gelidium de México.

Originalmente, el agar Gelidium constituía lo que consideramos agar genuino, asignando el término agaroides a los productos extraídos de otras algas marinas. Aunque estos agaroides no tienen las mismas propiedades que el agar Gelidium, pueden utilizarse como sustitutos en determinadas condiciones. Después de la Segunda Guerra Mundial, la industria japonesa se vio obligada a utilizar cantidades cada vez mayores de materias primas distintas del tradicional Gelidium pacificum o Gelidium amansii debido a la creciente demanda de la industria alimentaria internacional.

Se obtuvo un aumento en la fuerza del gel de agar a través de mejoras en el proceso industrial durante los años cincuenta, y las diferencias entre el agar Gelidium genuino y los agaroides entonces disponibles se hicieron más claras. La fuerza del gel aumentó de 400 g / cm 2 (el máximo para el agar natural producido por la industria artesanal) a 750 g / cm 2 o más para el agar producido por métodos industriales. Los datos de la fuerza del gel se refieren al método Nikan-Sui que reemplazó al método primitivo de Kobe utilizado en el pasado. El método Nikan es más preciso y más fácil de reproducir. Se incluye una breve descripción del método en la sección de & quot; Propiedades & quot.

El descubrimiento japonés de los métodos alcalinos fuertes para la extracción de agar (ver la sección sobre "Procesos de fabricación") significó un aumento de la fuerza del gel de agar Gracilaria con la posterior utilización de algas marinas importadas de Sudáfrica para aumentar la materia prima disponible.

Hoy en día, la industria mundial del agar utiliza básicamente las siguientes algas:

(1) Diferentes especies de Gelidium recolectadas principalmente en España, Portugal, Marruecos, Japón, Corea, México, Francia, Estados Unidos, República Popular China, Chile y Sudáfrica.

(2) Gracilaria de diferentes especies recolectadas en Chile, Argentina, Sudáfrica, Japón, Brasil, Perú, Indonesia, Filipinas, República Popular de China, incluida la provincia de Taiwán, India y Sri Lanka.

(3) Pterocladia capillace de Azores (Portugal) y Pterocladia lucida de Nueva Zelanda.

(4) Gelidiella de Egipto, Madagascar, India, etc.

La figura 2 muestra Gracilaria y Gelidium

También se utilizan otras algas, como Ahnpheltia plicata del norte de Japón y las islas Sakhalin, así como Acanthopheltis japonica, Ceramiun hypnaeordes y Ceranium boydenii (Levring, Hoppe y Schmid, 1969).

La distribución geográfica de los agarofitos es muy amplia y se muestra en la Figura 3. Las áreas principales están ubicadas indicando las clases y especies más importantes. El tamaño de las áreas coloreadas se relaciona con la extensión del área de recolección, no con la cantidad de algas recolectadas.

Hay áreas en las que se recolectan diferentes tipos de agarófitos. Este es el caso de Chile, un país de recursos excepcionales de algas. En 1984, se recolectaron 6 126 toneladas de Gracilaria seca de su larguísima costa y se exportaron a Japón, así como otras 5 500 toneladas que fueron utilizadas por la industria local. Simultáneamente, en áreas rocosas, intercaladas entre áreas arenosas donde crece Gracilaria, se recolectaron 304 toneladas de Gelidium seco y se exportaron a Japón. En países como India y Sri Lanka, Gracilaria y Gelidiella crecen juntas en áreas relativamente cercanas entre sí. Por lo general, los recursos de Gelidium se explotan en gran medida, al igual que los de Gracilaria de buena calidad. Actualmente se está desarrollando la utilización de Gelidiella.

Es difícil evaluar la colección actual de agarófitos en todo el mundo, pero dado que Japón ha sido, durante mucho tiempo, el único país importador de estas algas (básicamente necesarias para mantener los niveles de producción de la industria del agar), las estadísticas japonesas (Figura 4a ) son muy valiosos para ofrecer una visión real de la situación. Tenga en cuenta que en las estadísticas japonesas, las algas Gelidium están separadas de otras algas. En 1984, Japón importó 678 toneladas de algas Gelidium y 9 462 toneladas de "otros agarófitos", principalmente Gracilaria y Gelidiella. Sin embargo, parece que Gelidiella se incluye con Gelidium en algunos casos, probablemente porque algunos psicólogos han llamado Gelidiella rigidum a las algas, a pesar de que generalmente se las considera de una clase diferente. En cuanto a los fabricantes de agar, no son Gelidium ya que el producto obtenido a partir de entonces es completamente diferente al agar Gelidium real. Los lotes de Gelidium asignados a Filipinas (3 toneladas) e Indonesia (62 toneladas) son probablemente Gelidiella. También Gelidium de Brasil es muy probablemente Pterocladia que se puede confundir con Gelidium (no se cosecha Gelidium en Brasil, mientras que algunas cantidades de Pterocladia sí).

TÉCNICAS DE COSECHA INDUSTRIAL

Las técnicas de recolección industrial de agarófitos varían, según las circunstancias, pero se pueden clasificar de la siguiente manera:

(1) recolección de algas arrastradas a la orilla

(2) recolectar algas marinas cortándolas o arrancándolas de sus lechos

(3) cultivo.

Figura 4a Algas Agarofitas importadas por Japón 1984

Figura 4b Producción de agar en diferentes países indicando las algas utilizadas

República Popular de China

Recolección de algas arrastradas a la orilla. En algunos países estas algas se llaman & quot; quotargazos & quot, & quotarribazon & quot o & quot; lavado de playa & quot. Se trata de algas muertas que, tras completar su ciclo biológico, son separadas por tormentas estacionales. Se recolectan a mano o por medios mecánicos desde la costa o mediante eyectores de aire comprimido desde embarcaciones que recolectan las algas asentadas en cavidades a profundidades de unos 25 metros (& quot; pozos & quot). Para evitar la fermentación, las algas deben recolectarse poco después de que se hayan separado de su bodega.

Recolectar algas marinas cortándolas o arrancándolas de sus lechos. Este trabajo se realiza con rastrillos o pinzas manipuladas desde embarcaciones o por buzos que operan desde embarcaciones utilizando botellas de aire comprimido o, más frecuentemente, un compresor en la embarcación conectado al buceador por una manguera (& quothookah & quot). Gelidium generalmente ocurre en lechos rocosos, Gracilaria en arenosos. En general es factible operar con buzos en profundidades entre 3 y 20 metros. En Japón, durante muchos años, las algas han sido recolectadas por buceadoras o & quotamas & quot que operan desde flotadores y bucean usando solo sus pulmones. Estas técnicas de corte o desarraigo se utilizan exclusivamente en algunos países y son similares a las que se utilizan para carragenanofitas como Chondrus crispus y otras especies de Chondrus (Irish Moss) o alginófitos como Macrocystis o Laminaria, adaptando el equipo en cada caso a la características morfológicas de cada clase de algas.

Cultivo. En la actualidad, la necesidad de mayores cantidades de agarófitos ha provocado la introducción de cultivos de Gracilaria, en la línea de los carragenofitos. Sin embargo, este cultivo ha tenido un éxito limitado y hay algunos aspectos que deben resolverse antes de que pueda adoptarse de forma generalizada. En la actualidad, el cultivo con fines industriales se realiza en la República Popular China, su provincia de Taiwán y ahora se está iniciando en Chile (Ren, Wang y Chen, 1984 Ren y Chen, 1986 Cheuh y Chen, 1982 Yang, 1982 Pizarro y Barrales, 1986 Santelices y Ugarte, 1986).

La preservación de las algas, entre el momento de la recolección y su uso real por parte del fabricante del agar, es muy importante. No es práctico construir una fábrica de procesamiento de algas que consuma algas al ritmo de su recolección. La fabricación de agar a gran escala hace necesario tener cantidades disponibles de agarofitos estabilizados de tal manera que puedan ser transportados a largas distancias, al menor costo posible, y almacenados durante mucho tiempo antes de su procesamiento.

El primer paso es la conservación mediante deshidratación, para evitar la fermentación que primero destruye el agar y luego las algas. El segundo paso es prensar la maleza con una prensa hidráulica en balas de unos 60 kg, para reducir el volumen y los costes de transporte y almacenamiento de retorno. La deshidratación debe ser suficiente para garantizar la conservación de las algas, de lo contrario se producirá una fermentación anaeróbica dentro de las balas provocando altas temperaturas e incluso la carbonización de las algas durante el almacenamiento en almacenes. En general, el contenido de humedad se reduce mejor a aproximadamente un 20% mediante secado natural o artificial. Evidentemente es necesario evitar mojarse durante el transporte y / o almacenamiento.

En el caso de Gracilaria el problema es más difícil de resolver. La hidrólisis enzimática de su agar ocurre espontáneamente incluso con contenidos de humedad relativamente bajos, pero a tasas variables según la especie de Gracilaria y su origen. Gracilaria cosechada en India, Sri Lanka, Venezuela, Brasil, y generalmente en aguas cálidas, tiene un agar (agarosa) menos resistente a la hidrólisis enzimática que la Gracilaria chilena que es la más estable. Sin embargo, la estabilidad del agar contenido en Gracilaria es menor que la del agar Gelidium El agar Gelidium puede conservarse en algas marinas indefinidamente siempre que hayan sido bien tratadas.

La hidrólisis del agar contenido en Gracilaria puede deberse a enzimas endógenas o al crecimiento de Bacillus cereus. Pterocladia capillacea de las Azores se comporta como Gelidium pero no se ha descrito el grado de hidrólisis de algas marinas como Gelidiella, Ahnpheltia y otras.

Las algas importadas por Japón en 1984 se muestran en la Figura 4a. Bajo el epígrafe de & quotGelidium & quot, se importaron 678 toneladas a un valor de Yen 253741000 CIF (Yen 374 250 por tonelada) el tipo de cambio en ese momento era US $ 1 = Yen 246,17, por lo que un precio CIF promedio fue de US $ 1520 por tonelada. tonelada. El flete debe ser considerado en este precio, especialmente el alto costo del flete entre países alejados de Japón como Chile (303 toneladas), Brasil (20 toneladas), Madagascar (74 toneladas) o Sudáfrica (100 toneladas). Estos países representan el 73% de las algas importadas como Gelidium. Las algas importadas por Japón son de alta calidad y excepcionalmente limpias, de lo contrario no sería posible pagar los costos de transporte. Esto se aplica a Gelidium, Gracilaria o cualquier otro agarofito. Estas especificaciones, que normalmente no son tan exactas cuando el fabricante se encuentra cerca del lugar de recolección, aumentan considerablemente los costos de recolección y preparación.

Los datos económicos de & quot; Otras algas & quot son más difíciles de interpretar porque aunque estas algas se denominan Gracilaria, pueden incluir otros agarófitos como Gelidiella, Pterocladia, Ahnpheltia, etc., con diferentes contenidos de agar y por lo tanto diferentes propiedades. Bajo el título "Otras algas marinas", se importaron 9 462 toneladas (en comparación con Gelidium a 678 toneladas) con un valor de 2882525 000 yenes (304 642 yenes por tonelada) o 1 237 dólares EE.UU. por tonelada (CIF). Los costos de flete en este precio también deben ser considerados ya que más del 80% de las & quotOtras algas marinas & quot se importan de países como Chile (6128 toneladas), Brasil (607 toneladas), Argentina (58 toneladas) y Sudáfrica (895 toneladas). ).

Gracilaria es el componente principal de & quotOtras algas marinas & quot. Sin embargo, se importan dos tipos de Gracilaria y no se distinguen entre sí en las estadísticas de importación. Un tipo son las algas limpias y secas. El otro tipo es Gracilaria que ha sido sometido a un fuerte tratamiento alcalino en el país exportador esto provoca la hidrólisis alcalina de los grupos sulfato, aumentando la fuerza de gel del agar que finalmente se extrae, aunque el rendimiento se reduce. Este tratamiento es caro y por ello el producto obtenido ("Colagar") tiene un precio superior al de las algas secas sin tratar. Todo esto debe tenerse en cuenta al considerar el precio medio de las "Otras algas marinas" que se calcula a partir de las estadísticas de importación japonesas.

EVALUACIÓN DE AGAROFITOS

La literatura existente sobre la evaluación de las algas marinas como fuentes industriales de agar es confusa porque, en general, las contribuciones provienen de científicos bien intencionados que a menudo no están familiarizados con los requisitos de especificación, los diferentes grados de agar comercial y los métodos analíticos utilizados.

En primer lugar, las evaluaciones se han realizado a partir de algas perfectamente secas y limpias, como muestras de hierbas, por lo que sus datos no tienen ningún parecido con el obtenido por los fabricantes que procesan cientos o miles de toneladas de algas comerciales que llegan en etapas muy diferentes. de conservación, a menudo mezclado con cantidades importantes de impurezas como piedras, conchas, arena, otras algas marinas, epífitas, así como otros productos añadidos durante la recolección, secado y empaque (como malezas, hojas, madera, plásticos, etc. ). La cantidad de sales que quedan en las algas después del secado es otra variable.

En segundo lugar, la evaluación se realiza frecuentemente sin tener en cuenta las características del agar obtenido, o comparándolo solo en algunos parámetros (por ejemplo, con una muestra de agar bacteriológico). Después de realizar algunas pruebas sin conocer las especificaciones reales de los productos, y en muchos casos sin conocimiento de los métodos analíticos habituales, se declara similar. Todo esto equivale a determinar la densidad de una roca y, viendo que es 3,52, deducir que la roca es un diamante.

En tercer lugar, una evaluación de agarofitos es un proceso mucho más largo y complicado que el que se suele realizar y publicar en artículos científicos. En nuestra opinión debe iniciarse con una serie de pruebas o experimentos a escala de laboratorio. En principio haríamos varias extracciones, combinando algunos tratamientos preliminares con diferentes condiciones de extracción. La experiencia previa de la persona que va a elegir los experimentos es muy importante para obtener buenos resultados. En estas condiciones es habitual operar con equipos de vidrio y con cantidades de unos 50 g de algas para cada ensayo. Para un trabajo normal es necesario tener entre 400 y 500 g de algas secas.

A continuación, siempre que se hayan obtenido resultados prometedores y se haya realizado una prueba de control de calidad simplificada, el siguiente paso debería ser la ejecución de una planta piloto. Una evaluación realizada en un laboratorio puede ser suficiente para una publicación científica pero en la industria, antes de trabajar en una fábrica, operamos una planta piloto de prueba con cantidades entre 750 gy 1 kg de algas secas en condiciones lo más similares posible a las del proceso industrial. Para realizar este ensayo es conveniente disponer de unos 5 kg de algas secas. Utilizando el agar obtenido en la planta piloto se realizan análisis completos, así como una evaluación del producto en aplicaciones prácticas. Para que esta evaluación sea útil es necesario el conocimiento de los procesos industriales de fabricación del agar, así como la experiencia de las especificaciones reales que exigen los diferentes mercados y las aplicaciones prácticas del producto.

Es fundamental que los agarofitos sean evaluados correctamente antes de iniciar operaciones en aquellos países que actualmente están estudiando sus recursos de algas. Para ello, una vez que se hayan estimado las cantidades de agarofitos de una parte de la costa, incluso aproximadamente, se debe evaluar la cantidad y calidad del agar en las algas en términos de su uso práctico. Para ello, es importante contar con la cooperación de fabricantes de agar experimentados.

Un punto muy importante a considerar es la forma en que se toman muestras representativas de grandes áreas de agarófitos. El muestreo no es tan fácil como parece. Para tener muestras representativas es necesario seguir los procedimientos de muestreo clásicos y tomar algunas precauciones especiales adicionales. La muestra debe empaquetarse inmediatamente en bolsas resistentes, impermeables y bien fijadas. Con demasiada frecuencia, las muestras se reciben en paquetes rotos que contienen algas extremadamente secas y, en muchos casos, con cantidades significativas de arena fuera de la bolsa y se esparcen por todo el paquete.

En cuanto se recibe la muestra en el laboratorio de control, se verifica la impermeabilidad de la bolsa plástica y se registra en el protocolo. A continuación, sobre alícuotas tomadas de forma que se garantice su composición homogénea, se deben realizar las siguientes determinaciones.

1. Humedad. Use un horno de secado a 65 & # 176C.

2. Pure seaweed determination .

Seaweeds must be soaked in fresh water for at least two hours, with stirring, to eliminate soil and sand which are decanted, filtered, dried and weighed separately. Once the seaweeds are fully swelled the agarophytes must be manually separated from all the other materials such as rocks, shells, calcareous inclusions, other seaweeds, epiphytes, various vegetable remains, wood, plastic, etc. All these materials must be dried and weighed. Then the agarophytes are washed with water until clear (some samples, particularly Gracilaria , may contain clay). When cleaned they must be dried (in an oven at 65°C) and weighed the percentage of the sample which is "pure seaweed" is calculated.

3. Extraction - of an aliquot part of the sample

It is impossible to assign a general extraction method valid for any agarophyte. For many years we have been industrially evaluating a large number of agarophyte batches. They have come from the five continents and include Gelidium , Gelidiella , Pterocladia and Gracilaria species. We do know that it is impossible to give a valid extraction method for any agarophyte to evaluate its yield, obtaining at the same time a standard quality which allows evaluation to be useful from the point of view of the industry.

Nevertheless, we shall try to give here certain procedures that are only evaluation methods and should not be confused with industrial processes.

It is advisable to use 50 g or more in case the agarophytes have a lower percentage of "pure seaweed" than usual. Extraction conditions (pH, temperature, pressure, time, etc.) as well as the seaweed: water ratio must be adapted in each case so as to try to obtain an extract with approximately 1% agar.

A traditional Japanese method for Gelidium is the following. The seaweed (40 g) is washed three times. It is then placed in a beaker with water (40 ml, or more if necessary, to cover the seaweed which can be flattened). Adjust to pH4 using acetic acid. After 10 minutes the temperature is increased and maintained close to the boiling point for three minutes. Water is added to bring the total volume to 800 ml with this dilution the pH increases to approximately 6 unless it is adjusted with acetic acid or a dilute solution of caustic soda. The extraction is carried out at a temperature just below boiling point for 3-4 hours, checking the seaweed texture to determine the end of the extraction. The liquid is then filtered through a cloth and the residue is squeezed. As soon as the extract gels, it is subjected to freezing, or syneresis, and afterwards is dried and weighed.

In general Gelidium , Pterocladia or Gelidiella seaweeds can also be evaluated as follows. The seaweed is mixed with a solution of sodium carbonate (0.5%, 30 ml solution for each gram of seaweed) and held at approximately 90°C for 30 minutes, allowing the alkali to diffuse into the seaweed. The seaweed is washed with running water for 10 minutes. It is then extracted with water, 30 ml for each gram of seaweed, adjusting the pH with tartaric acid between 4.8-8.0 depending on the type of seaweed and on the extracting conditions. If extraction is done at boiling point (without pressure) it is usual to work between pH 4.8-6.0 and if it is done under pressure it will depend on the pressure used but at 127°C (1.5 kg.cm -2 ) it is usual to operate between pH 6-8. The solution is filtered and the product is finished, either by freezing or syneresis, and dried.

In the case of certain Gracilaria species, it is necessary to make what is called a sulfate alkaline hydrolysis, working in stronger alkaline conditions to change the L-galactose 6-sulfate into 3,6-anhydro-L-galactose. For this purpose the diffusion is made with sodium hydroxide solution (at least 0.1M) for at least one hour at a temperature between 80-97°C, but with care not to extract the agar. The extraction which follows is carried out with stirring at practically neutral pH, without pressure (95-100°C), for a very variable time depending on the type of the Gracilaria used, but it can take several hours.

Then analytical control test will be needed to verify that the agar obtained meets the physico-chemical specifications that will be explained later.

Early studies of agar showed that it contained galactose, 3,6-anhydro-galactose (Hands and Peats, 1938 Percival, Somerville and Forbes, 1938) and inorganic sulfate bonded to the carbohydrate (Samec and Isajevic, 1922).

Structural studies have been based on the fractionation of agar by several methods, followed by chemical and enzymatic hydrolysis. The enzymatic hydrolysis studies of W. Yaphe have been of great importance. Subsequently the spectrochemical studies using infrared spectroscopy and nuclear magnetic resonance spectroscopy, particularly 13 C n.m.r., have explained many important points in the structure of these intricate polysaccharides.

Infrared spectroscopy is the most accessible method for many laboratories. Figure 8a shows different absorption bands that have been characterized for the agar spectrum. The typical bands of a carrageenan spectrum are also shown (Figure 8b) because many of its important uses are similar to those of agar and the spectra are useful for distinguishing the two. The bands at 1 540 and at 1 640 cm -1 are especially noteworthy. They come from the proteins existing in agar and about which only a few comments have been made before. The peak at 890 cm -1 has not been identified up to the present time.

N.M.R. is of great importance when studying these structures. However the technique is difficult and it requires 13 C n.m.r. equipment which only a few laboratories can afford. For this kind of work it is best to consult W. Yaphe's papers, published from 1977 - for example, Bhattacharjee, Hamer and Yaphe, (1979) Yaphe (1984) Lahaye, Rochas and Yaphe (1986).

Agar is now considered to consist of two fractions, agarose and agaropectin. These were first separated by Araki (1937) and the results were published in Japanese so they were not readily available to some research workers. For example Jones and Peats (1942) assigned a single structure to agar defining it as a long D-galactose chain residue, joined by 1,3-glycosidic links in the proposed structure, this chain was ended by a residue of L-galactose joined to the chain at C-4 and with C-6 semi-esterified by sulfuric acid. This false structure is still mentioned in some books on natural polymers and even in recently published encyclopedias.

Interest in agarose was lost until Hjerten, working under Tiselius at the University of Uppsala, began to look for an electrically neutral polysaccharide suitable for electrophoresis and chromatography. He published an improved method of separation based on the use of quaternary ammonium salts (Hjerten, 1962). A technique for agarose preparation using polyethylene glycol was reported by Russell, Mead and Polson (1964) and later this was patented with Polson (1965) named as the inventor. Both methods gave agarose of sufficient purity to allow the study of its structure.

Figure 5 shows the type, and approximate relative quantities, of the residues that can be separated from the total hydrolysis of agarose.

Figure 6 shows agarose to be a neutral, long-chain molecule formed by b -D-galactopyranose residues connected through C-1 and C-3 with 3,6-anhydro-L-galactose residues connected through C-2 and C-4. Both residues are repeated alternately. The links between the monomers have different resistance to chemical and enzymatic hydrolysis. 1,3- a links are more easily hydrolysed by enzymes ( Pseudomonas atlantica ) and neoagarobiose results. 1,4- b links are more easily hydrolysed by acid catalysts and yield agarobiose units. Nevertheless 1,4- b links make the polysaccharide chain particularly compact and resistant to breakage, as is found in the peptidoglycan of bacteria. The molecular weight assigned to non-degraded agarose is approximately 120 000. This weight has been determined by sedimentation measurements and it represents 400 agarbiose (or 800 hexose) units linked together.