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¿Qué podemos esperar cuando cultivamos un moho en un líquido?

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Actualmente estoy ejecutando un proyecto corto en mi escuela, donde estoy tratando de investigar la biodegradación de tintes de efluentes textiles usando Fursarium sp. La mayoría de los artículos que he leído utilizan una suspensión de esporas como semilla, porque es fácil de cuantificar y quizás también reproducible. Bueno, estaba pensando en cómo las células vegetativas pueden tener diferentes rasgos metabólicos, entonces, ¿cuáles son los resultados que puedo esperar si utilizo las células vegetativas como semilla? Además, si tuviera que usar las células vegetativas como semilla, ¿se considera semicuantitativo si la semilla (célula vegetativa) se recupera en un tapón de agar de igual diámetro?


El moho es algo que muchas veces damos por sentado, como algo que nos hace tener que tirar el pan o que el queso huela mal.

El moho es, de hecho, un organismo fascinante que ha tenido muchos usos diferentes a lo largo de los años y nuestras vidas no serían las mismas sin él.

La mayoría de nosotros sabemos que la comida parece enmohecerse más rápidamente en el verano que en el invierno cuando hace más frío. La comida en los refrigeradores parece conservarse más tiempo que la comida que se deja al sol. ¿Es esto cierto? ¿La temperatura realmente afecta la velocidad a la que crece el moho?

Nota IMPORTANTE

Tenga en cuenta que algunas personas son alérgicas al moho, consulte a su médico oa sus padres. Si este es el caso, no elija el Experimento del pan con molde. Utilice siempre guantes y una mascarilla, lávese las manos y no coma ni beba mientras realiza este estudio.


Experimentos de molde de pan - # 1

Cosas que necesitará:

  • Pan de molde
  • Agua
  • Bolsa de plástico con cremallera
  • Cinta adhesiva
  • Marcador
  • Computadora portátil
  • Lápiz
  • Cámara

[caption align = "aligncenter" width = "600"] El moho crece en colonias [/ caption]

Experimento científico del molde del pan n. ° 1:

  1. Pide permiso para realizar este experimento.
  2. Espolvorea agua sobre una rebanada de pan.
  3. Pon el pan en la bolsa de plástico.
  4. Selle la bolsa de plástico.
  5. Tape la bolsa de plástico para cerrarla.
  6. Coloque un pequeño trozo de cinta en la esquina de la bolsa y etiquételo con la fecha de hoy.
  7. Guarde la bolsa de plástico en un lugar cálido fuera de la casa donde no la toquen durante 7 días.
  8. Informe a sus padres y hermanos sobre su experimento para que nadie intente tirar (¡o comer!) Su experimento.
  9. Realice un seguimiento del crecimiento de su moho comprobándolo todos los días. Escriba notas sobre el tamaño y el color de su colonia. Si puede, tome una fotografía del moho todos los días.
  10. Al final del experimento, Tire la bolsa sellada que contiene el pan mohoso. No querrás estar cerca cuando se abra la bolsa. La inhalación de esporas de moho es dañina.

Preguntas: ¿Cuándo apareció el moho por primera vez? ¿De qué color es el molde? ¿Por qué el molde es de diferentes colores? ¿En qué parte del pan creció el moho? (por ejemplo, la esquina, el medio) ¿Por qué crees que es así? ¿Por qué crees que inhalar moho es malo? (Sugerencia: al moho le encanta crecer en lugares cálidos y húmedos y comerá casi cualquier cosa orgánica)


Crecimiento de bacterias: 4 fases principales

La fase de retraso representa un período de crecimiento activo durante el cual las bacterias se preparan para la reproducción, sintetizando ADN, varias enzimas inducibles y otras macromoléculas necesarias para la división celular. Por lo tanto, durante esta fase, puede haber un aumento de tamaño (volumen) pero no un aumento en el número de células. La fase de retraso puede durar una hora o más, y cerca del final de esta fase, algunas células pueden duplicar o triplicar su tamaño.

La fase de retraso es necesaria antes del inicio de la división celular debido a una variedad de razones. Si las células se toman de un cultivo antiguo o de un cultivo refrigerado, es posible que las células sean viejas y carezcan de ATP, cofactores esenciales y ribosomas.

Si el medio es diferente de aquel en el que la población microbiana estaba creciendo anteriormente, las células necesitarían nuevas enzimas para utilizar nuevos nutrientes en el medio.

Sin embargo, estas deficiencias son satisfechas por las células durante la fase de retraso. Por lo tanto, la fase de retraso es generalmente más larga si las células se toman de un cultivo viejo o refrigerado. Por el contrario, si las células se toman de un cultivo joven de crecimiento vigoroso (población microbiana) y se inoculan en un medio nuevo de composición idéntica, la fase de retardo puede ser corta o incluso estar ausente.

2. Fase de crecimiento logarítmico o exponencial:

Las células bacterianas preparadas para la división celular durante la fase de retraso entran ahora en la fase logarítmica o la fase de crecimiento exponencial durante la cual las células se dividen a una velocidad máxima y su tiempo de generación alcanza un mínimo y permanece constante.

El crecimiento en esta fase es bastante equilibrado (es decir, todos los constituyentes celulares se sintetizan a velocidades constantes entre sí), por lo tanto, los cultivos de fase logarítmica, los más uniformes en términos de propiedades químicas y fisiológicas, se utilizan generalmente en estudios bioquímicos y fisiológicos.

Dado que el tiempo de generación es constante, una gráfica logarítmica de crecimiento durante la fase logarítmica produce una línea casi recta. Esta fase se llama fase logarítmica porque el logaritmo de la masa bacteriana aumenta linealmente con el tiempo, y fase de crecimiento exponencial porque el número de células aumenta como una función exponencial de 2 n (es decir, 2 1, 2 2, 2 3, 2 4, 2 5 y así sucesivamente).

La fase logarítmica también representa el momento en que las células bacterianas son más activas metabólicamente y, en la producción industrial, este es el período de máxima actividad y eficiencia.

3. Fase estacionaria:

Dado que las bacterias crecen en un volumen constante de medio de cultivo por lotes y no se agregan nutrientes frescos, el crecimiento de la población bacteriana finalmente cesa y la curva de crecimiento se vuelve horizontal. Esta fase de crecimiento en bacterias se alcanza a un nivel de población de alrededor de 109 células por ml.

El cese del crecimiento puede deberse al agotamiento de los nutrientes disponibles o a la acumulación de productos finales inhibidores del metabolismo. El cese del crecimiento también puede deberse a O2 disponibilidad particularmente en el caso de aerobios. El oxígeno no es muy soluble y puede agotarse tan rápidamente que solo las células de la superficie del cultivo pueden encontrar la concentración de oxígeno necesaria para un crecimiento adecuado.

Tarde o temprano, las células bacterianas comienzan a morir y el número de tales células equilibra el número de células recién nacidas y la población bacteriana se estabiliza. Este estado de crecimiento, durante el cual el número total de células viables permanece constante debido a que no hay un aumento neto adicional en el número de células y la tasa de crecimiento es exactamente igual a la tasa de muerte, se denomina fase estacionaria.

La transición entre las fases logarítmica y exponencial y estacionaria implica un período de crecimiento desequilibrado durante el cual los diversos componentes celulares se sintetizan a ritmos desiguales. En consecuencia, las células en la fase estacionaria tienen una composición química diferente a las de la fase exponencial.

4. Fase de muerte o declive:

Después de un tiempo, la cantidad de células moribundas comienza a exceder la cantidad de células recién nacidas y, por lo tanto, la cantidad de células bacterianas viables presentes en un cultivo discontinuo comienza a disminuir.

Esta condición representa la muerte de la fase de declive que continúa hasta que la población se reduce a una pequeña fracción de células más resistentes, o puede morir por completo. Al igual que el crecimiento exponencial, la muerte también es exponencial, pero inversa, ya que el número de células bacterianas viables disminuye exponencialmente.


Principio de rayado

La muestra / inóculo se diluye extendiéndola por la superficie de la placa de agar. Mientras se raya en áreas sucesivas de la placa, el inóculo se diluye hasta el punto en que solo queda una célula bacteriana depositada cada pocos milímetros en la superficie de la placa de agar. Cuando estas células bacterianas solitarias se dividen y dan lugar a miles y miles de nuevas células bacterianas, se forma una colonia aislada. Se pueden obtener cultivos puros recogiendo colonias bien aisladas y volviendo a sembrarlas en placas de agar frescas.

Una suposición común es que una colonia aislada de bacterias es la progenie de una sola célula bacteriana (es decir, la colonia es el clon). Sin embargo, esto no es necesariamente verdad. Con especies en las que las células forman una agrupación característica durante las divisiones celulares, la unidad formadora de colonias puede desarrollarse a partir de un grupo de células en lugar de formar una sola célula. Por ejemplo, grupos de estafilococos, cadenas de estreptococos, etc.

Materiales necesarios:

  • Una fuente de bacterias (cultivo madre, placa de agar previamente estriada o cualquier otro inóculo)
  • Bucle de inoculación
  • Un delantero / mechero
  • Mechero bunsen
  • Lysol (10% v / v)
  • Placa de agar (agar nutritivo o cualquier otro medio de agar)
  • Toallas de papel

Consejos para obtener los mejores resultados:

  • Use solo una pequeña cantidad de inóculo.
  • Rayar ligeramente para que no rasgue el agar.
  • Flame el bucle después de rayar cada cuadrante.
  • Asegúrese de que la superficie de la placa no tenga gotas de humedad condensada.

Propósito de rayar

  • Producir colonias aisladas de un organismo (principalmente bacterias) en una placa de agar. Esto es útil cuando necesitamos separar organismos en un cultivo mixto (para purificar / aislar una cepa particular de contaminantes) o cuando necesitamos estudiar la morfología de la colonia de un organismo.
  • Para identificar el organismo: las pruebas bioquímicas para identificar bacterias solo son válidas cuando se realizan en cultivos puros.

Pregunta: sacudir el moho de la ropa en una placa de cultivo - Candida, posiblemente Candida auris?

Golpeé una placa de agar (MEA con cloranfenicol) contra algo de ropa contaminada.

Creció en el plato y en el adhesivo de cinta adhesiva alrededor del plato. (mirada lechosa) - Fotos adjuntas.

Me preguntaba si conocía de antemano al mejor laboratorio / experto para probar esto basándose solo en la apariencia (si es posible saberlo mirando).

Tengo una lista de laboratorios / expertos que proporcionó

en DIRECTORIOS DE CONSULTORES & amp; EXPERTOS - Anónimo por correo electrónico privado 2019/02/01

Respuesta: re: quiero que el mejor laboratorio / experto examine la sustancia lechosa que creció en el adhesivo alrededor de la placa de agar

Lo siento, no, no tengo más recomendaciones además de las que intercambiamos por correo electrónico en 2017.

Es interesante que, por apariencia superficial, parezca haber un crecimiento dominante en su cultura, pero, por supuesto, no tenemos forma de saber si esa es la contaminación de moho dominante o importante en su ropa mohosa.

revise la VALIDEZ DEL KIT DE PRUEBA DE CULTIVO DE MOHO donde verá que la mayoría de los mohos no crecerán en el cultivo en absoluto, por lo que puede haber otros mohos, incluidos los dañinos (así como otros patógenos dañinos que no son moho) que no son detectados por su placa de cultivo.

Tenga cuidado: asegúrese de consultar de inmediato con su médico sobre cualquier inquietud por enfermedades relacionadas con hongos o moho (o cualquier otra enfermedad para el caso)

Quería agregar que es interesante que parezca, por apariencia superficial, que haya un crecimiento dominante en su cultura, pero por supuesto no tenemos forma de saber si esa es la contaminación de moho dominante o importante en su ropa mohosa.

Seguimiento del lector:

Es interesante. otras placas golpeadas contra la ropa crecieron & quot; las mismas & quot; manchas blancas, así como negras y otras. (hay variables que podrían haber afectado esto que podría explicar)

(gracias, he leído las trampas de las pruebas en placa de agar)

Esta es una situación de moho diferente de apto / diferente a la de 2017.

Este molde entró en nuestro apartamento desde un abrigo de la tienda en línea (groupon) para mi padre. Nunca había experimentado algo como esto antes, se extendió como la pólvora a sus otras camisas, abrigos / suéteres. en cuestión de minutos. (puede explicar más si está interesado)

(Aparentemente, hay algunos informes anecdóticos / de investigación profanos sobre un tipo de toxina muy contaminante cruzada. Una que se propaga como un incendio forestal y otras propiedades extrañas. Puedo encontrar un buen enlace para usted, si está interesado)

Respuesta:

Asegúrese de enviar toda la información que pueda.

En mi experiencia, los mohos pueden crecer muy rápidamente, de 24 a 48 horas, en las condiciones adecuadas. La toxicidad varía enormemente al igual que la sensibilidad humana individual a los mohos.

La respuesta correcta es quitarse la ropa enmohecida y desecharla o probar con una limpieza profesional, e inspeccionar la misma área en busca de contaminación cruzada en la ropa cercana, así como encontrar y reparar las fuentes de humedad que fomentaron su crecimiento.

Seguimiento del lector:

-> 2019/04/10 [En febrero] describí mi situación como bastante extraña: una toxina entró en nuestro apartamento desde un abrigo de Groupon comprado en línea y se propagó como la pólvora en cuestión de minutos a otra ropa, en el aire. .

Y sigo teniendo problemas para deshacerme de él, 4 meses después.

Ahora estoy consultando con un médico en Massachusetts que ayuda a los pacientes (protocolos de limpieza interna / inmunológica y externa / ambiental) con este tipo de toxina misteriosa y quothell. & Quot

Mi placa de agar con 1 crecimiento dominante se identificó como Candida (no identifican especies). Ver adjunto [informe del laboratorio de pruebas de moho, copia en archivo - Ed.]

Nota del editor: el informe del laboratorio de pruebas de moho del lector, de Immunolytics en Albuquerque NM, se completó el 04/02/19 e informó que una prueba de cultivo en Sabouraud Dextrose Agar de una muestra recolectada de una camisa de gamuza encontró Candida (esporas de levadura) en un nivel clasificado como TNTC & quot; Demasiado numerosos para contar & quot.

(Esta placa se golpeó contra una camisa contaminada, DESPUÉS de que la camisa se empapó en una mezcla de hidrógeno / amonio cuaternario y se secó al aire).

Es interesante según los artículos recientes del NY Times: Candida Auris se describe de manera similar como propagándose como un incendio forestal y tan difícil de erradicar, tuvieron que rociar peróxido de hidrógeno durante 1 semana (y aún así volvió a crecer), tuvieron que romper techos y pisos, etc.

Extractos citados por el lector:

Una vez que el germen está presente, es difícil erradicarlo de una instalación. Algunos hospitales han tenido que traer equipos de limpieza especiales e incluso arrancar baldosas del piso y del techo para deshacerse de ellos.

"Todo fue positivo: las paredes, la cama, las puertas, las cortinas, los teléfonos, el fregadero, la pizarra, los postes, la bomba", dijo el Dr. Scott Lorin, presidente del hospital. "El colchón, las barandillas de la cama, los orificios de los recipientes, las cortinas de las ventanas, el techo, todo en la habitación era positivo". - Los New York Times

    LO QUE USTED NECESITA SABER sobre Candida Auris, The New York Times, consultado en la fuente original del 11/04/2019: https://www.nytimes.com/2019/04/06/health/candida-auris-facts.html

Extractos: Candida auris es un hongo que, cuando ingresa al torrente sanguíneo, puede causar infecciones peligrosas que pueden poner en peligro la vida. Los científicos lo identificaron por primera vez en 2009 en un paciente en Japón. En los últimos años, ha surgido en todo el mundo, principalmente en hospitales y hogares de ancianos. Se han reportado 587 casos de C. auris en los Estados Unidos, según los Centros para el Control y la Prevención de Enfermedades, la mayoría de ellos en Nueva York, Nueva Jersey e Illinois.

Respuesta:

Si no lo ha hecho, debe consultar con su médico sobre cualquier posible enfermedad, incluidas las relacionadas con el moho, ya que estamos de acuerdo en que algunas de ellas, como C. auris, pueden ser muy graves y difíciles de tratar.

Con respecto a su prueba de cultivo original hágalo usted mismo, menciono nuevamente que debido a que la mayoría de los mohos no crecerán en el cultivo en absoluto, dicha prueba es incompleta: puede haber otros mohos en su hogar, incluidos los dañinos (así como otros patógenos dañinos que no son mohos como bacterias) que no fueron detectados por su placa de cultivo.

Cuidado: no sabemos por su prueba de cultivo genérico si su Candida (un hongo de levadura común) es C. auris o algo más. Pero a partir de su descripción de su origen (sacudiendo una muestra de la ropa), tendría sentido actuar rápidamente para que un consultor más experto lo entreviste, escuche sus inquietudes e inspeccione y pruebe su hogar en busca de moho, bacterias, u otros patógenos o toxinas.

Afortunadamente, hay laboratorios de pruebas que pueden especializarse Candida a partir de una muestra recogida correctamente. No pierda más tiempo en métodos de prueba poco fiables.

No hay muchas buenas noticias sobre Candida auris excepto para tener en cuenta que las personas con mayor riesgo son aquellas con sistemas inmunológicos comprometidos, a los que se pueden agregar intuitivamente otras poblaciones en riesgo, como los ancianos (yo), los asmáticos (yo), los bebés y las personas cuyos otros tratamientos médicos, como para el cáncer resulta en un sistema inmunológico debilitado.

Un resumen de las especies más comunes de Candida no incluye en la lista C. auris, lo que hace que esa levadura tan peligrosa sea poco común.

Entre los problemas médicos de Candida, la vaginitis por Candida (CV) es la segunda causa más común de infecciones vaginales: 85-90% de las levaduras que se aíslan de los hisopos de prueba vaginales serán Candida albicans

  • Candida albicans. 50% - levadura patógena oportunista que ocurre en el intestino humano, detectada en la boca y el tracto gastrointestinal del 40-60% de los adultos sanos - Wikipeda - o 65,3% (Pfaller et al 2010).
  • Candida glabrata. 15% - 30% - comúnmente asociado con candidiasis - o 11,3% (Pfaller et al 2010).
  • Candida parapsilosis. 15% - 30% - comúnmente asociado con candidiasis - o 6% (Pfaller et al 2010).
  • Candida tropicalis. 15% - 30% - comúnmente asociado con candidiasis - o 7.2% (Pfaller et al 2010).
  • Candida krusei.

- Fuente: citado a continuación, consultado el 11/04/2019

    [PDF] Medical Diagnostic Laboratories, LLC, sitio web: www.mdlabcom, Tel: 877-269-0090, consultado el 11/04/2019, fuente original: https://www.mdlab.com/forms/TechBulletin/Candida.pdf Eyre, David W., Anna E. Sheppard, Hilary Madder, Ian Moir, Ruth Moroney, T. Phuong Quan, David Griffiths y col. Un brote de Candida auris y su control en un entorno de cuidados intensivos [PDF] New England Journal of Medicine 379, no. 14 (2018): 1322-1331.

Reportamos un brote de colonización e infección por C. auris en nuestra UCI de neurociencias. La explicación más convincente para la transmisión sostenida de C. auris que observamos fue la persistencia del organismo en el equipo reutilizable, en particular, en las sondas de temperatura axilar de la superficie de la piel.

Los procedimientos de control de infecciones recomendados actualmente para los brotes de C. auris incluyen el aislamiento del contacto con el paciente y una limpieza mejorada con productos a base de cloro.8,13 Además, implementamos la "ordenación" para facilitar la limpieza, la reducción del equipo de cabecera y la eliminación de ventiladores y aire forzado. mantas de convección.

Candida auris es una levadura emergente resistente a múltiples fármacos que causa infecciones invasivas graves con una alta mortalidad. Se descubrió por primera vez en 2009 y, desde entonces, se han notificado casos individuales o brotes en más de 20 países de los cinco continentes. Controlar C. auris es un desafío por varias razones:

(1) es resistente a múltiples clases de antifúngicos,

(2) se puede identificar erróneamente como otras levaduras mediante los métodos de identificación comúnmente disponibles, y

(3) debido a su capacidad para colonizar pacientes quizás de forma indefinida y persistir en el entorno sanitario, puede propagarse entre pacientes en entornos sanitarios.

Comentarios de los lectores y preguntas y respuestas de los lectores

Pregunta:

Necesito ayuda para encontrar médicos e inspectores de moho en el área de la Bahía de Oakland.

Respuesta:

Consulte también el DIRECTORIO DE EXPERTOS en la parte superior de la página, donde encontrará inspectores ambientales.

TL Entiendo el atractivo de la prueba de la placa de asentamiento del molde de cultivo y, de hecho, es posible que algunos mohos que encuentre puedan estar realmente presentes en el entorno donde se realizó la prueba,

pero en mi OPINIÓN no hay nada exacto en el uso de una prueba de cultivo para detectar moho en un edificio, ya que la mayoría de los mohos no crecen en la cultura y porque aquellos a los que les gusta un medio de cultivo en particular pueden no ser los más serios o incluso dominantes en el entorno real.

También es posible que lo que está creciendo en una placa de cultivo sea simplemente una colonia de una espora que sopló en la ventana o puerta o se cayó de la camisa de alguien.

El 2019-08-22 por T.L. Y niño

Esa muestra pasó de 1 día para el siguiente, la primera foto que le envié anteriormente era de hoy, menos de 70 horas desde el inicio de la prueba. Esta que estoy enviando es de 18 horas antes de mi última foto. De alguna manera esa foto en particular enviada anteriormente, noté condensación en el interior donde está el color oscuro. Solamente.

Aquí está la foto tomada ayer por la mañana.

Entiendo que estas pruebas dyi posiblemente no sean concluyentes, pero es todo lo que tengo que hacer ahora mismo. No puedo permitirme que alguien venga aquí y haga la prueba. Nuestros médicos son inútiles y solo pueden hacer pruebas para ver si tenemos una posible toxicidad por moho dentro de nuestros cuerpos con dinero propio, así que

Estoy bastante solo y muy limitado para hacer muchas pruebas desde que estoy en SSDI, y muy posiblemente tenga los primeros signos de EM o parte de ese tipo de familia médica *

Tanto mi hijo como yo nos enfermamos en nuestro apartamento. Todos pueden ver que estamos enfermos, especialmente yo. Se fue de vacaciones, la familia pagó, regresó a casa y tuve que limpiar el pesado polvo negro húmedo que se acumuló una vez más en un lapso rápido.
Siento que hay signos visibles de moho o algo así, mi cuerpo es diferente ahora, veo fibras que flotan en el aire y aterrizan en mi piel.

Finalmente, más de un año después, consiguieron un plomero de verdad para que revisara los lavabos de la cocina y del baño. Les he dicho en numerosas ocasiones que el agua corre a lo largo de las encimeras de granito, que tienen que ir a alguna parte. Pero después de que la persona de mantenimiento * arregló * ambos lavabos después de mudarse, me despidieron desde entonces. Hasta ahora, más o menos.

Aparentemente, la persona de mantenimiento colocó los grifos incorrectos, ha sido una fuga todo este tiempo difícil de ver debido a la forma en que se remodeló el lugar 9 hace casi 10 años. Aún más de un año después, tengo el viejo refrigerador que huele a muster aún sin ser reemplazado. Y me di cuenta de que no voy a ir a ninguna parte para que estas cosas se aborden adecuadamente y ahora mi salud se ha visto comprometida.

Aunque visitamos a la familia, no es un lugar al que podamos ir a vivir. Y en este punto realmente necesito asegurarme de que no tengo ni he inhalado moho tóxico. Al mirar este plato, solo veo un kine creciendo y me preocupa mucho que sea aspergillus

No solo eso, si es así, tuve que limpiar estas cosas cuando nos mudamos a nuestro lugar hace un año y medio. Lo cual tomó 5 lavados en el piso solo para evitar que tengamos los pies negros. Entonces, desde entonces, no he sido especialmente el mismo

Esta placa de Petri en este momento es todo lo que tengo para continuar al precio que puedo pagar. Menos de 72 horas esto ha sido lo que veo
¿Existe una mínima posibilidad de que esto se pueda probar con precisión? Incluso si usted siente * no * por favor envíeme un correo electrónico.

Pregunta: interpretar los niveles de moho cuando no veo el moho en el interior

Estoy comprando un condominio y los inspectores han detectado niveles elevados de moho (14000 aspergillus Pennicilum frente a 600 en exteriores) en dos pruebas de aire. 2 Los inspectores no encontraron señales de moho o agua en las paredes (imágenes térmicas), nada debajo de los lavabos, etc. Hace 5 años hubo una fuga en el techo de la bañera y fue "detectada y reparada de inmediato". El aire acondicionado es nuevo, solo tiene 1 año, pero tiene algo de moho en 3 lugares. El vendedor desea limpiar el sistema de aire acondicionado y los conductos, limpiar el aire durante 2 días y luego hacer una prueba de aire inmediata para ver si el problema está solucionado.

Voy a hacer que inspeccionen el techo de la bañera, perforando y revisando agujeros y, si es necesario, cortando un área de 6 "x 6".

Pregunta: sin una construcción importante, solo aire acondicionado y remediación de conductos y limpieza de aire, ¿necesitamos 24 horas después de la limpieza de aire, o se puede realizar la prueba de aire de inmediato? ¿Una prueba inmediata detectará otra fuente de moho (no CA) si existe, o debemos esperar 24 horas después del lavado con aire?

Respuesta:

No mucho de esto me suena sensato.

Si hace cinco años se detectara y reparara un problema grave de moho, no se detectarían niveles altos de Penicillium sp. esporas hoy.

Sospecho que el problema nunca se encontró, O ha habido otras fugas y hay otros depósitos de moho que necesitan ser encontrados y removidos. Este caso ilustra por qué las "pruebas" de molde por sí solas, sin una inspección competente, no son tan útiles. Solo tenemos que visitar la investigación de novo, esta vez, para encontrar dónde reside el problema.

Consulte (y continúe la discusión en)

sobre cómo encontrar moho escondido

sobre la realización de cortes de prueba para el moho. Es posible que el alcance no sea adecuado.

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  • Mark Cramer Servicios de inspección Mark Cramer, Tampa Florida, Sr. Cramer es un ex presidente de ASHI, la Sociedad Estadounidense de Inspectores de Viviendas y es un inspector de viviendas de Florida y educador de inspección de viviendas. (727) 595-4211 [email protected]
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  • Adkins and Adkins Dictionary of Roman Religion analiza a Robigus, el dios romano de la protección de cultivos y el legendario progenitor del hongo de la roya del trigo.
  • Kansas State University, departamento de patología vegetal, página web de extensión de patología vegetal sobre el hongo de la roya del trigo: consulte http://www.oznet.ksu.edu/path-ext/factSheets/Wheat/Wheat%20Leaf%20Rust.asp
  • UNA GUÍA BREVE sobre EL MOHO, LA HUMEDAD y SU HOGAR, [PDF] Agencia de Protección Ambiental de EE. UU. EPA de EE. UU.: Incluye consejos básicos para propietarios de edificios, ocupantes y operaciones de limpieza de moho. Ver http://www.epa.gov/mold/moldguide.htm
  • EPA de EE. UU. - Eliminación de moho en escuelas y edificios comerciales - - EPA de EE. UU.
  • EPA de EE. UU. - Una Breva Guia a Moho - Hongo
  • UNA GUÍA BREVE sobre EL MOHO, LA HUMEDAD y SU HOGAR, [PDF] Agencia de Protección Ambiental de EE. UU. EPA de EE. UU.: Incluye consejos básicos para propietarios de edificios, ocupantes y operaciones de limpieza de moho. Ver http://www.epa.gov/mold/moldguide.htm
  • & quotPrograma de prevención de enfermedades para ciertos cultivos de hortalizas, & quot; David B. Langston, Jr., patólogo de extensión de plantas - Vegetales, Universidad de Georgia (documento PDF) fuente original: www.reeis.usda.gov/web/crisprojectpages/209797.html
  • Prevención de enfermedades en huertos familiares [PDF], Patricia Donald, Departamento de Microbiología y Patología Vegetal, Lewis Jett
    Departamento de Horticultura, Extensión de la Universidad de Missouri - extension.missouri.edu/publications/DisplayPub.aspx?P=G6202
  • & quotManagement of Powdery Mildew, Leveillula taurica, in Greenhouse Peppers, & quot; Ministerio de Agricultura y Tierras, Columbia Británica - Fuente original: www.agf.gov.bc.ca/cropprot/peppermildew.htm
  • Fifth Kingdom, Bryce Kendrick, ISBN13: 9781585100224, recomendamos la versión en CD-ROM de este libro. Esta tercera edición es una enciclopedia compacta pero completa de todo lo micológico. Todos los aspectos de los hongos, desde las aflatoxinas hasta las zppspores, con una mezcla accesible de brío e ingenio. Los 24 capítulos están llenos de información actualizada sobre clasificación, levaduras, líquenes, dispersión de esporas, alergias, ecología, genética, patología vegetal, hongos depredadores, control biológico, simbiosis mutualistas con animales y plantas, hongos como alimento, deterioro de alimentos. y micotoxinas.
  • Hongos, Identificación de filamentosos, Manual de laboratorio clínico, Guy St-
  • EPA de EE. UU .: Eliminación de moho en escuelas y edificios comerciales [copia en archivo en /sickhouse/EPA_Mold_Remediation_in_Schools.pdf] - EPA de EE. UU.
  • Micología, Fundamentos del diagnóstico, Fran Fisher, Norma B. Cook, W.B. Saunders Co. 1998, ISBN 0-7216-5006-6
  • .

    120 Carlton Street Suite 407, Toronto ON M5A 4K2. Tel: (416) 964-9415 1-800-268-7070 Correo electrónico: [email protected] La firma proporciona SERVICIOS profesionales de INSPECCIÓN DE HOGARES y también una amplia EDUCACIÓN DE INSPECCIÓN DE HOGARES y PUBLICACIONES relacionadas con la inspección de viviendas. Alan Carson fue presidente de ASHI, la Sociedad Estadounidense de Inspectores de Viviendas.

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The number of available media to grow bacteria is considerable. Some media are considered general all-purpose media and support growth of a large variety of organisms. A prime example of an all-purpose medium is tryptic soy broth (TSB). Specialized media are used in the identification of bacteria and are supplemented with dyes, pH indicators, or antibiotics. One type, enriched media, contains growth factors, vitamins, and other essential nutrients to promote the growth of fastidious organisms, organisms that cannot make certain nutrients and require them to be added to the medium. When the complete chemical composition of a medium is known, it is called a chemically defined medium. Por ejemplo, en EZ medium, all individual chemical components are identified and the exact amounts of each is known. En complex media, which contain extracts and digests of yeasts, meat, or plants, the precise chemical composition of the medium is not known. Amounts of individual components are undetermined and variable. Nutrient broth, tryptic soy broth, and brain heart infusion, are all examples of complex media.

Figure 1. On this MacConkey agar plate, the lactose-fermenter E. coli colonies are bright pink. Serratia marcescens, which does not ferment lactose, forms a cream-colored streak on the tan medium. (credit: American Society for Microbiology)

Media that inhibit the growth of unwanted microorganisms and support the growth of the organism of interest by supplying nutrients and reducing competition are called selective media. An example of a selective medium is MacConkey agar. It contains bile salts and crystal violet, which interfere with the growth of many gram-positive bacteria and favor the growth of gram-negative bacteria, particularly the Enterobacterias. These species are commonly named enterics, reside in the intestine, and are adapted to the presence of bile salts. los enrichment cultures foster the preferential growth of a desired microorganism that represents a fraction of the organisms present in an inoculum. For example, if we want to isolate bacteria that break down crude oil, hydrocarbonoclastic bacteria, sequential subculturing in a medium that supplies carbon only in the form of crude oil will enrich the cultures with oil-eating bacteria. los differential media make it easy to distinguish colonies of different bacteria by a change in the color of the colonies or the color of the medium. Color changes are the result of end products created by interaction of bacterial enzymes with differential substrates in the medium or, in the case of hemolytic reactions, the lysis of red blood cells in the medium. In Figure 1, the differential fermentation of lactose can be observed on MacConkey agar. The lactose fermenters produce acid, which turns the medium and the colonies of strong fermenters hot pink. The medium is supplemented with the pH indicator neutral red, which turns to hot pink at low pH. Selective and differential media can be combined and play an important role in the identification of bacteria by biochemical methods.

Piénsalo

  • Distinguish complex and chemically defined media.
  • Distinguish selective and enrichment media.

The End-of-Year Picnic

The microbiology department is celebrating the end of the school year in May by holding its traditional picnic on the green. The speeches drag on for a couple of hours, but finally all the faculty and students can dig into the food: chicken salad, tomatoes, onions, salad, and custard pie. By evening, the whole department, except for two vegetarian students who did not eat the chicken salad, is stricken with nausea, vomiting, retching, and abdominal cramping. Several individuals complain of diarrhea. One patient shows signs of shock (low blood pressure). Blood and stool samples are collected from patients, and an analysis of all foods served at the meal is conducted.

Bacteria can cause gastroenteritis (inflammation of the stomach and intestinal tract) either by colonizing and replicating in the host, which is considered an infection, or by secreting toxins, which is considered intoxication. Signs and symptoms of infections are typically delayed, whereas intoxication manifests within hours, as happened after the picnic.

Blood samples from the patients showed no signs of bacterial infection, which further suggests that this was a case of intoxication. Since intoxication is due to secreted toxins, bacteria are not usually detected in blood or stool samples. MacConkey agar and sorbitol-MacConkey agar plates and xylose-lysine-deoxycholate (XLD) plates were inoculated with stool samples and did not reveal any unusually colored colonies, and no black colonies or white colonies were observed on XLD. All lactose fermenters on MacConkey agar also ferment sorbitol. These results ruled out common agents of food-borne illnesses: E. coli, Salmonela spp., and Shigella spp.

Figure 2. Gram-positive cocci in clusters. (credit: Centers for Disease Control and Prevention)

Analysis of the chicken salad revealed an abnormal number of gram-positive cocci arranged in clusters (Figure 2). A culture of the gram-positive cocci releases bubbles when mixed with hydrogen peroxide. The culture turned mannitol salt agar yellow after a 24-hour incubation.

All the tests point to Staphylococcus aureus as the organism that secreted the toxin. Samples from the salad showed the presence of gram-positive cocci bacteria in clusters. The colonies were positive for catalase. The bacteria grew on mannitol salt agar fermenting mannitol, as shown by the change to yellow of the medium. The pH indicator in mannitol salt agar is phenol red, which turns to yellow when the medium is acidified by the products of fermentation.

The toxin secreted by S. aureus is known to cause severe gastroenteritis. The organism was probably introduced into the salad during preparation by the food handler and multiplied while the salad was kept in the warm ambient temperature during the speeches.

  • What are some other factors that might have contributed to rapid growth of S. aureus in the chicken salad?
  • ¿Por qué S. aureus not be inhibited by the presence of salt in the chicken salad?

Conceptos clave y resumen

  • Chemically defined media contain only chemically known components.
  • Selective media favor the growth of some microorganisms while inhibiting others.
  • Enriched media contain added essential nutrients a specific organism needs to grow
  • Differential media help distinguish bacteria by the color of the colonies or the change in the medium.

Opción multiple

EMB agar is a medium used in the identification and isolation of pathogenic bacteria. It contains digested meat proteins as a source of organic nutrients. Two indicator dyes, eosin and methylene blue, inhibit the growth of gram-positive bacteria and distinguish between lactose fermenting and nonlactose fermenting organisms. Lactose fermenters form metallic green or deep purple colonies, whereas the nonlactose fermenters form completely colorless colonies. EMB agar is an example of which of the following?

  1. a selective medium only
  2. a differential medium only
  3. a selective medium and a chemically defined medium
  4. a selective medium, a differential medium, and a complex medium

Haemophilus influenzae must be grown on chocolate agar, which is blood agar treated with heat to release growth factors in the medium. H. influenzae is described as ________.

Complete el espacio en blanco

Blood agar contains many unspecified nutrients, supports the growth of a large number of bacteria, and allows differentiation of bacteria according to hemolysis (breakdown of blood). The medium is ________ and ________.

Rogosa agar contains yeast extract. The pH is adjusted to 5.2 and discourages the growth of many microorganisms however, all the colonies look similar. The medium is ________ and ________.

Piénsalo

What is the major difference between an enrichment culture and a selective culture?

Pensamiento crítico

Haemophilus, influenzae grows best at 35–37 °C with

5% CO2 (or in a candle-jar) and requires hemin (X factor) and nicotinamide-adenine-dinucleotide (NAD, also known as V factor) for growth. [1] Using the vocabulary learned in this chapter, describe H. influenzae.


Microbes in the Food Industry | Microorganisms | Biología

There are many useful application of microbes in the food industry. They influence the quality, availability and quantity of food. Microorganisms are used to change one substance to another which is used as food, such as milk to yoghurt and cheese, sugar to wine and bread.

Fermented Dairy Products:

Fermented milk is produced by inoculating pasteurised milk with specific culture of microorganisms. The different fermented dairy products include yoghurt and cheese.

Bacteria is used in Yoghurt Making:

Yoghurt is a dairy product which is produced by the bacterial fermentation of milk. Most commonly, cow’s milk is used, though it can be made from any kind of milk. It can be prepared from a variety of milk including whole, skimmed, dried, evaporated or semi-skimmed milk.

The steps involved in yoghurt making are illustrated in Fig. 1:

The milk sugar, i.e. lactose is fermented into lactic acid by the friendly bacteria, Strepto­coccus salivarius, S. thermophilus and Lactobacillus bulgaricus. These bacteria are collectively known as lactic acid bacteria or LAB. The bacteria feed on the lactose and release lactic acid as a waste product.

The acid cause the curdling of the milk protein, casein into a solid mass called curd. The gel like texture and taste of yoghurt is due to the fermentation of lactose to lactic acid. The increased acidity (pH = 4-5) also prevents the proliferation of other potentially pathogenic bacteria.

Both unpasteurised and pasteurized milk may be used for yoghurt making. The use of unpasteurised milk maintains the healthy balance of bacteria and enzymes of milk in its unprocessed state under very carefully controlled temperature and environmental conditions. To ensure complete fermentation two or more different bacteria may be used together.

Yoghurt is often sold sweetened and flavoured, or with fruit added at the bottom. The flavour varies in different countries.

una. Lassi is yoghurt-based beverage in India and is consumed either salty or sweet. Salty lassi is usually flavoured with ground- roasted cumin and black pepper powder, while the sweet variety is served with lemon, mango or other fruit juice.

B. A lassi-like, salty drink called ayran is popular in Turkey and Bulgaria and is prepared by mixing yoghurt with water and salt.

In India, Bulgaria and Turkey yogurt is prepared at home using a small amount of plain active culture yogurt as the starter culture. The milk is boiled to kill undesirable microbes. It is cooled to about 40°C. A tablespoon of starter culture is added and mixed thoroughly. It is left undisturbed for about 6 hours.

Bacteria and Fungi are used in Cheese Making:

Cheese is prepared by inoculating milk with a starter culture containing specific micro­organisms. Cheese is a solid food made from the milk of various animals, most commonly cows. Milk from goat, sheep, reindeer and water buffalo may also be used. There are several types of cheese.

Fermentation of milk leads to lactic acid production, which sours the milk. This leads to coagulation of milk protein, casein. The solid part of the milk produced by coagulation is known as curd and the liquid is known as whey.

The curds can be separated and pressed into desired shape and whey is used as food source for yeasts, which in turn can be processed as cattle feed and is rich in protein and vitamins. The cheese can be matured or ripened by the addition of bacteria or fungi or both. The bacteria added reduce the pH, alters texture and develops a flavour.

Coagulation can be controlled using rennet tablets, which contains the enzyme rennin. Rennin is an enzyme present in the stomach of Calves but now is also available in genetically engineered bacteria. Coagulation can also be done using acids such as vinegar or lemon juice.

Depending on the nature of the organism added, cheese is of the following types:

una. Cheddar cheese is prepared by the addition of bacteria to enhance its flavour and texture.

B. The use of mould fungi produces Roquefort cheese and blue cheese

C. A combination of both bacteria and fungi produces camembert cheese.

D. Swiss cheese is prepared by the addition of Propionibacterium sharmanii. The big holes in the cheese is because of the production of large amounts of CO2.

The natural colour of cheese ranges from off-white to yellow. Herbs and spices may also be added to the cheese. Other factors that contribute to a different flavours and styles of cheese are different levels of milk fat, variations in length of aging, different processing treatments and different breeds of cows, sheep or other mammals.

Table 3 summarises the major classes of cheese:

Cheese is sold in the form as slices or in blocks or as a thick fluid. In addition, there is a class of cheese known as processed cheese or cheese food. Processed cheese is similar to cheese, but contains emulsifying salts acting as stabilisers. Heat treatment during the manu­facturing process gives processed cheese a mild flavour.

Other Fermented Foods:

Some important food produced in whole or in part by microbial fermentation are pickles, sausages, etc. Different microorganisms are added to specific stages of food production to produce the desired effect. Moulds are used for the fermentation of rice to produce a variety of oriental foods.

Yeast is used for Making Bread:

Yeast is a fungus that feeds saprotrophically. The enzymes secreted by the yeast cell, digest food that contains sugar and minerals. Yeast is used to make bread. When yeast is added to raising flour and water, carbon dioxide is produced which gets trapped in the dough prepared from the flour.

The dough rises and bread is made. The flour is usually made from wheat and contains starch. Starch is the energy source for the yeast. The flour also contains a protein called gluten, which forms sticky stretchy threads as the yeast works on the sugar. The threads trap the carbon dioxide and make the dough rise well.

Some commercial uses of yeast are shown in Table 4:

Yeast is used as leavening agent in baking since earlier times. The most commonly used species is Saccharomyces cerevisiae because of its ability to ferment sugar in the dough vigorously and to grow rapidly. The carbon dioxide used during the fermentation is responsible for the leavening or the rising of the dough. The procedure of mass production of Baker’s yeast is elaborate under controlled conditions of pH, temperature conditions.

Microorganisms as Food – Single Cell Protein:

Algae, yeasts and bacteria can be grown in large quantities to yield a cell crop which is rich in protein known as single cell protein. The protein may be used for human consumption or as animal feed. It may be a useful source of minerals, vitamins, fat and carbohydrates. The composition of the different SCP depends upon the organism and the substrate on which it grows.

The advantages of using microorganisms as a food source are:

una. They grow very fast and do not need much space as conventional crops.

B. They grow on a wide range of cheap, waste products of agriculture and industry such as petroleum products, methanol, ethanol, sugar, molasses, waste from paper mills etc. The secondary advantage is that they help in recycling the materials and thereby clean up the wastes.

C. They are high yielding. In a growth medium of 1000 lb of yeast in one day, many tonnes of protein is produced. This is about 10-15 times greater than soyabean and about 25-50 times greater than corn.

D. The protein content of the cells is very high. Yeast cells have a protein content as high as 40-50% for algae the range is 20- 40%.

mi. The proteins of the microorganism contain all the essential amino acids.

F. Some microorganisms, particularly yeasts, have high vitamin content.

gramo. Factors, such as climate do not affect them, since they do not occupy large areas of land.

Pruteen was the first major SCP to be produced. It was produced by a bacterium, Methylophilus methylotrophus. Methanol was used as a source of energy and the temperature was maintained at 30-40°C and pH at 6.7.

Pruteen was rich in essential amino acids and has high vitamin content. It is twice as nutritious as soyabean meal and was used as an animal feed.

Some disadvantages of using SCP:

una. The high nucleic acid content causes intestinal disturbances. It can also lead to an increase in the uric acid in the blood that will eventually lead to gout. Additional pro­cessing can be done to reduce the nucleic acid content, but this would increase the cost.

B. Bacterial cells have small size and low density, which makes harvesting from the fermented medium difficult and costly.

C. The taste is not acceptable for many persons. Individual taste and customs make microorganism unattractive as a food to some individuals.

Chocolate is prepared with the help of microbes. Chocolate comes from the seeds of cacao trees. These seeds are found in a white fleshy pod. To remove the seeds out of the pod, the pod is allowed to ferment with naturally occurring microbes that include yeasts and bacteria such as Lactobacilli and Acetobacter.


3. Preparation of growth media

3.1. Preparation of bacterial food source

A pesar de que C. elegans can be maintained axenically (Avery, 1993), it is difficult, and the animals grow very slowly. C. elegans is usually grown monoxenically in the laboratory using E. coli strain OP50 as a food source (Brenner, 1974). E. coli OP50 is a uracil auxotroph whose growth is limited on NGM plates. A limited bacterial lawn is desirable because it allows for easier observation and better mating of the worms. A starter culture of E. coli OP50 can be obtained from the CGC or can be recovered from worm plates. Use the starter culture to isolate single colonies on a streak plate of a rich medium such as LB agar [10 g Bacto-tryptone, 5 g Bacto-yeast, 5 g NaCL, 15 g agar, H2 O to 1 litre, pH 7.5] (Byerly et al., 1976). Using a single colony from the streak plate, aseptically inoculate a rich broth, such as L Broth [10 g Bacto-tryptone, 5 g Bacto-yeast, 5 g NaCl, H2 O to 1 litre, pH to 7.0 using 1 M NaOH. Put 100 ml into 250 ml screw-cap bottles and autoclave. The bottles of media can be stored at room temperature for several months (Byerly et al., 1976)]. Allow inoculated cultures to grow overnight at 37 ° C. The E. coli OP50 solution is then ready for use in seeding NGM plates. los E. coli OP50 streak plate and liquid culture should be stored at 4 ° C and will remain usable for several months.

3.2. Preparation of NGM petri plates

C. elegans is maintained in the laboratory on Nematode Growth Medium (NGM) agar which has been aseptically poured into petri plates (Brenner, 1974). Several sizes of petri plates are available and can be purchased from companies such as Nunc or Falcon. Smaller plates (35 mm diameter) are useful for matings or when using expensive drugs. Medium size plates (60 mm diameter) are useful for general strain maintenance, and larger plates (100 mm diameter) are useful for growing larger quantities of worms, such as for certain mutant screens. The NGM agar medium can be poured into petri plates easily and aseptically using a peristaltic pump. The CGC uses a Wheaton Unispense liquid dispenser (Wheaton Science Products). This pump can be adjusted so that a constant amount of NGM agar is dispensed into each petri plate. A constant amount of agar in the plates reduces the need for refocusing the microscope when you switch from one plate to another. When desired, drugs (e.g., levamisole, streptomycin or nystatin) can be added to the NGM solution just prior to its being poured Caldicott et al., 1994).

Protocol 1. Preparation of NGM plates

5 mg/ml cholesterol in ethanol (Do not autoclave!)

Mix 3 g NaCl, 17 g agar, and 2.5 g peptone in a 2 litre Erlenmeyer flask. Add 975 ml H2O. Cover mouth of flask with aluminium foil. Autoclave for 50 min.

Cool flask in 55 ° C water bath for 15 min.

Add 1 ml 1 M CaCl2, 1 ml 5 mg/ml cholesterol in ethanol, 1 ml 1 M MgSO4 and 25 ml 1 M KPO4 buffer. Swirl to mix well.

Using sterile procedures, dispense the NGM solution into petri plates using a peristaltic pump. Fill plates 2/3 full of agar.

Leave plates at room temperature for 2-3 days before use to allow for detection of contaminants, and to allow excess moisture to evaporate. Plates stored in an air-tight container at room temperature will be usable for several weeks.

It may be desirable to use 96- or 24-well microtiter plates when using expensive drugs or screening a large number of individual animals. For 24-well plates, use 1.5 ml NGM agar and seed with an E. coli OP50 lawn (Hartman and Herman, 1982). 96-well plates can be filled with 50 μ l of a 1% (w/w) suspension of E. coli OP50 in S Medium (see Protocol 2) (Hirsh et al., 1976). 96-well plates can also be filled with 50 μ l of NGM liquid with E. coli HB101 each well. To do this, packed E. coli HB101 cells are suspended in 4X their volume of NGM liquid, assuming 1g of cells equals 1 ml. One volume of the E. coli suspension is then added to 24 volumes of NGM liquid (Ralph Clover, personal communication). E. coli HB101 is available from the CGC. Care should be taken to prevent worms from crawling between wells only one strain of C. elegans should be used per microtiter plate so that there is no possibility of strains mixing.

3.3. Seeding NGM plates

Using sterile technique, apply approximately 0.05 ml of E. coli OP50 liquid culture to small or medium NGM plates or 0.1 ml to large NGM plates using a pipet. If desired, the drop can be spread using the pipet tip or a glass rod. Spreading will create a larger lawn, which can aid in visualizing the worms. Take care not to spread the lawn all the way to the edges of the plate keep the lawn in the center. The worms tend to spend most of the time in the bacteria. If the lawn extends to the edges of the plate the worms may crawl up the sides of the plate, dry out and die. Permitir que el E. coli OP50 lawn to grow overnight at room temperature or at 37 ° C for 8 hours (cool plates to room temperature before adding worms). Seeded plates stored in an air-tight container will remain usable for 2-3 weeks.


Trabajo práctico para aprender

Incubando the plates to promote growth of microbios is an essential part of any microbiology investigación. Incubating in aerobic conditions, and below human body temperature, reduce the risk of encouraging microorganisms (particularmente bacterias) that could be patógeno a humanos. Taping the lids on reduces the chance that students will open plates when viewing, but there are details below of how to kill plates completely if this is still a significant risk.

Health & Safety and Technical notes

Carry out a full risk assessment before starting any microbiology work (see note 1 for more details).

1 Before embarking on any practical microbiological investigation carry out a full risk assessment. For detailed safety information on the use of microorganisms in schools and colleges, refer to Basic Practical Microbiology – A Manual (BPM) which is available, free, from the Society for General Microbiology (email This email address is being protected from spambots. You need JavaScript enabled to view it. ) or go to the safety area of the SGM website (www.microbiologyonline.org.uk/safety.html) or refer to the CLEAPSS Laboratory Handbook, section 15.2.

2 Keep plates at room temperature or incubate at 20-25 °C for 2-3 days. Fungi grow more successfully at lower temperatures. Do not incubate at human body temperature (or above 30 °C) – this reduces the risk of culturing microbes that are pathogens to humans.

3 Reducing the temperature to 4 °C will slow the growth of any cultures – so you can show your students a 2-3 day growth if your lessons are a week apart.

4 All inoculated plates must be taped before incubation to ensure they cannot be opened accidentally. Do this by fixing with 2 or 4 short strips of adhesive tape at opposite edges of the dish. Do not seal completely as this may promote the growth of anaerobic pathogens or prevent normal growth by restricting diffusion of oxygen. See CLEAPSS Laboratory Handbook 15.2.10.

5 Plates are incubated upside down (agar up), so that condensation does not drip onto the plate and interfere with the developing microbes.

6 You might replace lids if condensation makes viewing difficult, so label plates on the bottom – with Chinagraph or wax pencils, permanent marker pens or a small adhesive label at one edge.

7 Count the plates out and in again to ensure that you have collected all the plates at the end of a lesson.

8 You can seal plates around the whole circumference just before viewing if you think there is any risk that your students will open the plates. Or you can stop the growth of a culture completely by placing a piece of filter paper into the lid of the inverted plate. Add a little 40% methanal solution carefully to soak the filter paper and replace the base. Leave for 24 hours. Remove the filter paper, remove any surplus liquid, and reseal the plate. See CLEAPSS Laboratory Handbook section 15.2.11. On Hazcard 063, methanal is described as toxic at this concentration and a category 3 carcinogen.

Web links

www.microbiologyonline.org.uk/sgmprac.htm
Society for General Microbiology – source of Basic Practical Microbiology, an excellent manual of laboratory techniques and Practical Microbiology for Secondary Schools, a selection of tried and tested practicals using microorganisms.

www.microbiologyonline.org.uk
MiSAC (Microbiology in Schools Advisory Committee) is supported by the Society for General Microbiology (see above) and their websites include more safety information and a link to ask for advice by email.

(Websites accessed October 2011)

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