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Pentatómido desconocido de la India

Pentatómido desconocido de la India


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Encontré este error el año pasado en agosto en Bharatpur, Rajasthan, India. La escala en la parte inferior de la imagen está en mm y el tamaño del error parece ser de aproximadamente 1,5 cm.

Se parece un poco a Halyomorpha halys, pero todas las imágenes de H. halys que he visto muestran marcas blancas y, a veces, más color y no las marcas oscuras como se muestra aquí.


Lista de inventos y descubrimientos indios

Esta lista de inventos y descubrimientos de la India asiática detalla las invenciones, los descubrimientos científicos y las contribuciones de la India, incluidas las naciones antiguas, clásicas y posclásicas en el subcontinente históricamente conocido como India y el estado indio moderno. Se basa en toda la historia cultural y tecnológica de la India, durante la cual la arquitectura, la astronomía, la cartografía, la metalurgia, la lógica, las matemáticas, la metrología y la mineralogía se encontraban entre las ramas de estudio de sus estudiosos. [1] Durante los últimos tiempos, la ciencia y la tecnología en la República de la India también se ha centrado en la ingeniería del automóvil, la tecnología de la información, las comunicaciones y la investigación en tecnología espacial y polar.

A los efectos de esta lista, las invenciones se consideran innovaciones tecnológicas desarrolladas en la India y, como tales, no incluyen las tecnologías extranjeras que la India adquirió a través del contacto. Tampoco incluye tecnologías o descubrimientos desarrollados en otros lugares y luego inventados por separado en la India, ni inventos de emigrados indios en otros lugares. Los cambios en conceptos menores de diseño o estilo y las innovaciones artísticas no aparecen en las listas.


Primer informe de chinche apestosa de litchi (Tessaratoma javanica Thunberg) brote en Bangladesh

Los productores de litchi informaron recientemente de la infestación de una plaga de insectos desconocida en la parte noreste de Bangladesh, que afectó notablemente la producción de litchi. Se realizó un estudio de campo para identificar esta especie de insecto invasor y se estudió la biología de este insecto en condiciones de laboratorio. Además, se determinó la gravedad del daño del insecto en los huertos de litchi afectados. Basado en características morfológicas, la especie invasora fue identificada como chinche apestosa litchi, Tessaratoma javanica (Thunberg) (Hemiptera: Tessaratomidae). Las chinches hembras ponen huevos en racimos (2.0) en la superficie superior o inferior de las hojas de litchi maduras y jóvenes. Después de la eclosión del huevo, las ninfas completaron cinco estadios distintos antes de llegar a los adultos. La longevidad de los chinches hediondos de litchi adultos varió según los tipos de sexo, mientras que las hembras vivieron más tiempo que los machos. El nivel de infestación de chinches apestosas de litchi varió mucho en las áreas de estudio. La infestación de chinches apestosas no se encontró en todas las inflorescencias de las plantas atacadas. Se registró una disminución significativa de frutos en la inflorescencia infestada. Este estudio, en primer lugar, confirma la invasión de la chinche apestosa litchi en Bangladesh, y esta información ayudaría a los científicos a desarrollar estrategias de MIP contra esta especie de chinche hedionda destructiva utilizando los recursos disponibles.

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Material y métodos

Diseño de imprimación

Secuencias de ADN disponibles públicamente para Anastatus Las especies asociadas con huevos de pentatómidos (generadas como parte de otro proyecto de investigación TD Gariepy, no publicado) se recuperaron del código de barras de ADN de los sistemas de datos de vida (BOLD), proyecto NASTA (Tabla 1). Las secuencias COI de 652 pb para Anastatus se alinearon utilizando el algoritmo Clustal W (Thompson et al., 1994) en Codon Code Aligner (v.4.0.4). La inspección visual de las regiones de similitud de secuencias de ADN se utilizó para diseñar cebadores anidados dentro de la región del código de barras de ADN que amplificaría las tres especies de Anastatus. Es más, Anastatus Las secuencias de ADN se alinearon con miembros representativos de Scelionidae (proyecto BOLD NSCEL) y Pentatomidae (proyecto BOLD HCNC) para garantizar que existía una variación de secuencia adecuada dentro de estas regiones para evitar la amplificación inespecífica de Pentatomidae y Scelionidae, ya que uno o más de estos especies podrían estar presentes en muestras mixtas de ADN extraídas de huevos del hospedador.

Especies COMPARTIMIENTO Origen norte
A. japonicus ACE0140 Fresco Halyomorpha halys masas de huevos en Asia 37
A. bifasciatus ACX9265 Centinela H. halys masas de huevos en Europa 3
Anastatus sp. ACP8173 Masa de huevos de pentatómidos no identificados en Canadá 10

Especificidad del cebador

La especificidad del par de cebadores (Ana-361F y HCO-2198) se probó en reacciones de PCR separadas con ADN de tres Anastatus especies, así como con el ADN de cinco parasitoides esceliónidos y 11 huéspedes pentatómidos (Tabla 2). La amplificación del ADN se realizó en un Eppendorf Mastercycler Pro PCR en un volumen de 25 µl que contenía 0,125 µl de Taq Platinum, 2,5 µl de tampón de PCR 10 ×, 1,25 µl de 50 m m de MgCl2, 0,125 µl de 10 µm dNTP (Invitrogen), 0,25 µl de 10 µ m Ana-361F (5′-ATCACATAGGGGTCCTTCAGTA-3 ′), 0,25 µl de 10 µm HCO2198 (5′-TAAACTTCAGGGTGACCAAAAAATCA-3 ′) (Folio 3 ′) al., 1994), 19,5 µl de ddH2O, y 1 µl de plantilla de ADN. Las condiciones de termociclado fueron las siguientes: desnaturalización inicial a 94 ° C durante 1 min, seguido de 35 ciclos de 94 ° C durante 40 s, 58 ° C durante 40 sy 72 ° C durante 1 min, y un período de extensión final de 5 min a 72ºC.

Grupo Especies norte
Parasitoides eupelmidos Anastatus japonicus Ashmead 17
Anastatus bifasciatus (Geoffroy) 11
Anastatus sp. 6
Parasitoides esceliónidos Telenomus chloropus (Thomson) 10
Trissolcus semistriatus (Nees) 10
Trissolcus japonicus Ashmead 10
Telenomus podisi Ashmead 11
Trissolcus euschisti (Ashmead) 4
Huéspedes pentatómidos Acrosternum hilare Decir 3
Banase dimidiadae (Decir) 2
Brochymena quadripustulatus (Fabricio) 3
Cosmopepla bimaculado (Thomas) 2
Dolycoris baccarum (L.) 2
Euschistus variolarius (Palisot) 2
Halyomorpha halys (Ståhl) 8
Nezara viridula (L.) 2
Podisus maculiventris (Decir) 3
Rhaphigaster nebulosa (Poda) 3
Thyanta acerra McAtee 2

Sensibilidad del cebador

La capacidad de los marcadores moleculares para detectar trazas de ADN parasitoide se probó en pruebas de tiempo para determinar qué tan pronto se podría detectar el ADN parasitoide después de la oviposición, qué etapas de desarrollo del parasitoide del huevo podrían detectarse y si A. bifasciatus El ADN se puede detectar en los huevos del hospedador después de la emergencia (según los niveles de rastros de ADN presentes en el excremento parasitoide que queda en el huevo). Como A. bifasciatus muestra regularmente la alimentación del huésped y puede mostrar un comportamiento de oviposición sin que se depositen huevos, la mortalidad del huésped causada por estos comportamientos es de interés en la evaluación de esta especie como agente de control biológico. Sin embargo, no se pueden medir por la emergencia de la descendencia o con la identificación de los huevos perforados del hospedador, particularmente en las muestras recolectadas en el campo. Por lo tanto, la sensibilidad de los cebadores se probó en H. halys huevos que habían sido sondeados y sometidos a alimentación del huésped. Cada tratamiento se repitió 20 veces.

Todas las pruebas, aparte del tratamiento de alimentación del huésped, se realizaron tanto con los huéspedes H. halys y Dendrolimus pini L. (Lepidoptera: Lasiocampidae), una especie no objetivo que recientemente se ha demostrado que es un huésped adecuado para A. bifasciatus. Como control negativo, fresco (& lt24 h), no parasitado H. halys y D. pini se utilizaron huevos.

Para obtener diferentes etapas del parasitoide, se expusieron huevos frescos del hospedador (& lt24 h) a 26 ° C a A. bifasciatus hembras en arenas de placa de Petri de 54 × 14 mm. El comportamiento de oviposición se observó con un microscopio 'Leica MS5' (Leica Biosystems, Nussloch, Alemania), los huevos sondeados se separaron y almacenaron durante diferentes períodos a 26 ° C para permitir que los parasitoides permanecieran en la fase de huevo (1 h) o se convirtieran en un estadio temprano (3 días), estadio tardío (7 días) y el estadio de pupa (21 días). Después de los períodos de tiempo seleccionados, los huevos se transfirieron a tubos Sarstedt de 2 ml llenos de etanol al 95%. Para los probados y alimentados por el anfitrión H. halys huevos, las hembras parasitoides se retiraron de los huevos después de la inserción observada del ovipositor y el final del primer evento de alimentación del huésped y los huevos se transfirieron inmediatamente al etanol.

Para corregir el comportamiento de parasitación sin oviposición real, se almacenan H. halys Los huevos fueron examinados visual y no invasivamente para A. bifasciatus presencia a los 7 y 21 días. Solo los huevos del hospedador que contenían larvas de parasitoides (después de 7 días) o pupas (después de 21 días) se transfirieron a etanol. La presencia de etapas de desarrollo más tempranas (así como todas las etapas en D. pini) rara vez se puede determinar de forma no invasiva, por lo que para estas categorías todos los huevos del hospedador se colocaron en etanol. Como control de la presencia de A. bifasciatus, adicional potencialmente parasitado H. halys y D. pini Se disecaron los huevos colocados en etanol 1 h (etapa de huevo), 12 h (etapa de huevo), 24 h (etapa de huevo) y 3, 7 y 21 días después del comportamiento de oviposición observado. Cuando A. bifasciatus La presencia se confirmó mediante disección, los restos del hospedador disecado y el parasitoide se sometieron a los mismos procedimientos moleculares que se describen a continuación. Además de los huevos del huésped que contienen prematuros A. bifasciatus etapas, los huevos vacíos se transfirieron a etanol & lt24 h después de la emergencia del parasitoide para determinar la capacidad de detectar ADN parasitoide a partir de huevos vacíos.

Aplicación a muestras recolectadas en campo

Como una de las aplicaciones más importantes del marcador molecular desarrollado es la identificación de Anastatus parasitoides de muestras recolectadas en el campo, huevos centinela expuestos en el campo de H. halys y D. pini se almacenaron durante ca. 6 meses a 26 ° C y sometidos a los mismos procedimientos de extracción y amplificación de ADN que las muestras contrarreloj. Esto incluía huevos vacíos (de los cuales Anastatus ya había emergido), así como huevos no emergidos de las mismas masas de huevos que produjeron Anastatus adultos.

Análisis molecular

Las muestras se transfirieron a viales Eppendorf de 1,5 ml individualmente con un pincel limpio y estéril, después de lo cual se añadieron 50 µl de tampón de digestión (100 m m NaCl, 10 m m Tris: HCL pH 8,0 y 25 m m EDTA). El material se trituró con un mezclador de pellets (VWR International, Lutterworth, Reino Unido) durante aprox. 1-2 min hasta homogeneizar. El material previamente diseccionado utilizado para controlar la presencia de parasitoides no se trituró más. La brocha y la punta del mezclador se lavaron primero con una solución de lejía diluida, luego con etanol al 70% y finalmente con agua entre cada muestra para evitar la contaminación. Se añadieron 50 µl de una mezcla de tampón de digestión (48 µl) y proteinasa K (0,2 mg ml -1 de Qiagen, Hilden, Alemania) (2 µl) al homogeneizado y los viales se incubaron durante 2-5 h en una temperatura de 56 °. C en un baño de agua con agitación (tipo 1083 GFL Gesellschaft für Labortechnik, Burgwedel, Alemania), después de lo cual se agregaron 40 µl de NaCl 6 m y 140 µl de cloroformo al 100%, las muestras se mezclaron durante 20 minutos con un agitador horizontal (HS 501 digital IKA Labortechnik, Staufen , Alemania). Después de 5 min de centrifugado a 20000 gramo, la fase de agua sobrenadante con los ácidos nucleicos aislados se transfirió a un nuevo tubo Eppendorf de 1,5 ml. Para precipitar el ADN se añadieron 140 µl de isopropanol al 100% así como 2 µl de 15 mg ml-1 de GlycoBlue (Thermo Scientific, Waltham, MA, EE.UU.) para teñir el sedimento en formación. La mezcla se incubó durante 5 min en el agitador y luego se centrifugó durante 20 min a 20000 gramo. Posteriormente, se descartó el sobrenadante y el sedimento restante se lavó 3 veces con 150 µl de etanol al 70% (centrifugado durante 5 min a 20000 gramo y el líquido descartado), después de lo cual los sedimentos de ADN se secaron al vacío (Concentrator 5301 Eppendorf, Hamburgo, Alemania) durante 1-2 min a 45 ° C hasta que todo el líquido restante se hubo evaporado. El ADN se resuspendió en 20 µl de agua Milli-Q.

Para la PCR, se preparó un volumen de reacción de 25 µl con 2,5 µl de tampón de reacción 10 × + Mg (Roche Diagnostics, Mannheim, Alemania), 0,125 µl de mezcla de dNTP de 10 mm (Fermentas, Waltham, MA, EE. UU.), 0,25 µl 10 µ m Cebador directo Ana-361F (5′-ATCACATAGGGGTCCTTCAGTA-3 ′) y 0,25 µl 10 µm de cebador inverso HCO-2198 (5′-TAAACTTCAGGGTGACCAAAAAATCA-3 ′), 20,75 µl de ddH2O, 0,125 µl de ADN polimerasa Taq (Roche Holding, Basilea, Suiza) y 1 µl de ADN molde. La PCR se ejecutó en un termociclador de 96 pocillos Veriti de Applied Biosystems (Thermo Scientific) con desnaturalización inicial a 94 ° C durante 1 min, 40 ciclos de hibridación de 40 s a 58 ° C y 1 min de extensión a 72 ° C, seguido por 5 min de extensión final a 72 ° C.

Los productos de la PCR se visualizaron con electroforesis en gel, se mezclaron 5 µl de ADN molde con 3 µl de tinte de carga en gel de ADN 6 × (Thermo Scientific) y se procesaron en un gel de agarosa al 2% con tampón TAE 1 × y 0,05 µl ml -1 de bromuro de etidio a continuación a 1 µl 0,1 µg µl -1 escalera flanqueante GeneRuler 100 bp Plus (Thermo Scientific). Los resultados se visualizaron con un GeneFlash Bio Imaging Gel Documentation System UV / VVIS Gene Flash (Syngene International, Bangalore, India).

Análisis estadístico

El número de muestras en las que Anastatus El ADN detectado se comparó para pruebas contrarreloj y muestras de campo con un modelo lineal generalizado (GLM) con una distribución binomial utilizando la función de enlace logit, con la detección como variable de respuesta dicotómica, y los hospedadores H. halys y D. pini como variable independiente para cada intervalo de tiempo / tratamiento, en R v.3.2.3 (R Core Team, 2014) y el entorno de desarrollo RStudio (2017).


Etiología de FUO

Las causas de la FUO generalmente se dividen en 4 categorías (consulte la Tabla: Algunas causas de la fiebre de origen desconocido (FUO)):

Trastornos del tejido conectivo (10 a 20%)

Infecciones son la causa más común de FUO. En pacientes con infección por VIH, deben buscarse infecciones oportunistas (p. Ej., Infección tuberculosa por micobacterias atípicas, hongos diseminados o citomegalovirus).

Trastornos comunes del tejido conectivo incluyen lupus eritematoso sistémico, artritis reumatoide, arteritis de células gigantes, vasculitis y artritis reumatoide juvenil de adultos (enfermedad de Still del adulto).

los causas neoplásicas más comunes son linfoma, leucemia, carcinoma de células renales, carcinoma hepatocelular y carcinomas metastásicos. Sin embargo, la incidencia de causas neoplásicas de FUO ha ido disminuyendo, probablemente porque se están detectando mediante ecografía y TC, que ahora se utilizan ampliamente durante la evaluación inicial.

Causas diversas importantes incluyen reacciones a medicamentos, trombosis venosa profunda, émbolos pulmonares recurrentes, sarcoidosis, enfermedad inflamatoria intestinal y fiebre facticia.

No se identifica ninguna causa de FUO en aproximadamente el 10% de los adultos.

Algunas causas de fiebre de origen desconocido (FUO)

Malestar abdominal o pélvico, generalmente sensibilidad

A veces, antecedentes de cirugía, traumatismo, diverticulosis, peritonitis o procedimiento ginecológico

Historia de ser arañado o lamido por un gato

Adenopatía regional, síndrome oculoglandular de Parinaud, cefalea

Cultivo (a veces de aspirado de ganglios linfáticos), títulos de anticuerpos, prueba de reacción en cadena de la polimerasa

Historial de transfusión de sangre de un donante positivo para CMV

Síndrome que se asemeja a la mononucleosis (fatiga, hepatitis leve, esplenomegalia, adenopatía), coriorretinitis

Posiblemente pruebas de reacción en cadena de la polimerasa

Dolor de garganta, adenopatía, dolor a la palpación en el cuadrante superior derecho, esplenomegalia, fatiga

Suele ocurrir en adolescentes y adultos jóvenes.

En pacientes mayores, los hallazgos típicos posiblemente estén ausentes.

Historial de conductas de alto riesgo (p. Ej., Relaciones sexuales sin protección, compartir agujas)

Pérdida de peso, sudores nocturnos, fatiga, adenopatías, infecciones oportunistas

Inmunoensayo combinado de cuarta generación

A veces, pruebas de ARN del VIH (para la infección aguda por VIH)

A menudo, antecedentes de factores de riesgo (p. Ej., Enfermedad cardíaca estructural, válvula cardíaca protésica, enfermedad periodontal, catéter intravenoso, uso de drogas inyectables)

Por lo general, un soplo cardíaco, a veces manifestaciones extracardíacas (p. Ej., Hemorragias en astilla, petequias, manchas de Roth, ganglios de Osler, lesiones de Janeway, dolor o derrame articular, esplenomegalia)

Hemocultivos seriados, ecocardiografía

Visitar o vivir en un área endémica

Eritema migratorio, erupción cutánea, dolor de cabeza, fatiga, parálisis de Bell, meningitis, radiculopatía, bloqueo cardíaco, dolor e hinchazón de las articulaciones

Dolor localizado, hinchazón, eritema

A veces, resonancia magnética (prueba más precisa), exploración con radionúclidos con indio-111, exploración ósea

Congestión prolongada, dolor de cabeza, dolor facial.

Historial de exposición de alto riesgo

Tos, adelgazamiento, fatiga

Uso de inmunosupresores

Radiografía de tórax, prueba cutánea de tuberculina y ensayo de liberación de interferón gamma n. ° 160 (PPD)

Frotis de esputo para bacilos acidorresistentes, pruebas de amplificación de ácidos nucleicos (NAAT), cultivo de fluidos corporales (p. Ej., Aspirados gástricos, esputo, líquido cefalorraquídeo)

Historia de viajes a áreas endémicas.

Exposición o ingestión de ciertos productos animales.

Pruebas serológicas para causas individuales

Frotis de sangre periférica para la malaria

Erupción evanescente de color rosa salmón, artralgias, artritis, mialgias, adenopatía cervical, dolor de garganta, tos, dolor en el pecho

ANA, RF, concentración de ferritina sérica, radiografías de las articulaciones afectadas

Dolor de cabeza unilateral, alteraciones visuales.

A menudo, síntomas de polimialgia reumática, a veces claudicación de la mandíbula

Sensibilidad de la arteria temporal al palpar

Velocidad de sedimentación globular, biopsia de arteria temporal

Fiebre, pérdida de peso, mialgias, artralgias, púrpura, hematuria, dolor abdominal, dolor testicular, angina, livedo reticularis, hipertensión de nueva aparición

Biopsia de tejidos afectados o angiografía

Historia de rigidez matutina en hombros, caderas y cuello.

Posiblemente sinovitis, bursitis, edema con fóvea de las extremidades

Creatinina quinasa, ANA, RF, velocidad de sedimentación globular

Posiblemente resonancia magnética de extremidades

A veces, antecedentes recientes de infección por Clamidia, Salmonela, Yersinia, Campylobacter, o Shigella

Oligoartritis asimétrica, uretritis, conjuntivitis, ulceraciones genitales

ANA, RF, pruebas serológicas para patógenos causantes

Poliartritis periférica simétrica, rigidez matutina prolongada, nódulos reumatoides subcutáneos en sitios de presión (superficie extensora del cúbito, sacro, parte posterior de la cabeza, tendón de Aquiles)

ANA, RF, anticuerpo de péptido anticíclico citrulinado (anti-CCP), radiografías (para identificar erosiones óseas)

Fatiga, artralgia, dolor torácico pleurítico, erupción malar, articulaciones inflamadas a la palpación, edema periférico leve, síndrome de Raynaud, serositis, nefritis, alopecia

Criterios clínicos, ANA, anticuerpos contra ADN bicatenario

Dolor abdominal, cambios en los hábitos intestinales, hematoquecia, debilidad, náuseas, vómitos, pérdida de peso, fatiga

Antecedentes de enfermedad hepática crónica, dolor abdominal, pérdida de peso, saciedad precoz, masa palpable en el cuadrante superior derecho

Ecografía y TC abdominal, biopsia hepática

A veces, antecedentes de trastorno mielodisplásico

Fatiga, adelgazamiento, sangrado, palidez, petequias, equimosis, anorexia, esplenomegalia, dolor óseo

Hemograma completo, examen de médula ósea

Adenopatía indolora, pérdida de peso, malestar general, sudores nocturnos, esplenomegalia, hepatomegalia

Síntomas que dependen del lugar de la metástasis (p. Ej., Tos y dificultad para respirar en caso de metástasis pulmonar, dolor de cabeza y mareos en caso de metástasis cerebral)

A menudo asintomático, descubierto durante una evaluación médica de rutina

Biopsia de masa o ganglio sospechoso, pruebas de imagen adecuadas para el área de interés

Índices anormales y asintomáticos con frecuencia detectados incidentalmente durante el cribado hemograma completo

Pruebas basadas en el trastorno sospechado

Pérdida de peso, sudores nocturnos, dolor en el flanco, hematuria, masa palpable en el flanco, hipertensión

Calcio sérico (para detectar hipercalcemia), análisis de orina, tomografía computarizada de los riñones

Larga historia de consumo de alcohol

A veces ascitis, ictericia, hígado pequeño o agrandado, ginecomastia, contractura de Dupuytren, atrofia testicular

Tiempo de protrombina / tiempo de tromboplastina parcial, fosfatasa alcalina, transaminasas, albúmina, bilirrubina

A veces, ecografía abdominal y TC

Dolor, hinchazón, a veces enrojecimiento de la pierna.

Fiebre coincidente con la administración de un fármaco (por lo general, dentro de los 7 a 10 días)

Presentación dramática, atípica, detalles vagos e inconsistentes, conocimiento de descripciones de libros de texto, mentira compulsiva o habitual (pseudologia fantástica)

Dolor abdominal, diarrea (a veces con sangre), pérdida de peso, heces positivas para guayaco

A veces, fístulas, ulceraciones perianales y orales, artralgias

Endoscopia digestiva alta con seguimiento del intestino delgado o enterografía por TC (enfermedad de Crohn)

Colonoscopia (colitis ulcerosa o colitis de Crohn)

* Los pacientes con FUO pueden carecer de los hallazgos típicos, pero deben buscarse dichos hallazgos.

ANA = anticuerpos antinucleares CMV = citomegalovirus RF = factor reumatoide.


Pentatómido desconocido de la India - Biología

Autor para correspondencia: Caroline Simmrita Chaboo ([email protected])

Editor académico: J. Santiago-Blay

* Reemplazo de una contribución al Simposio europeo sobre Chrysomelidae, celebrado el 23 de agosto de 2010 en Budapest, Hungría

(C) 2011 Kaniyarikkal Divakaran Prathapan. Este es un artículo de acceso abierto distribuido bajo los términos de Creative Commons Attribution License 3.0 (CC-BY), que permite el uso, distribución y reproducción sin restricciones en cualquier medio, siempre que se acredite el autor y la fuente originales.

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La biología, las plantas hospedantes y el estado de plagas de Podoncia Dalman, se revisan 1824 especies. Historia natural de Podontia congregata Baly, 1865, un escarabajo pulga endémico del sur de la India, se informa por primera vez. Se distribuye desde las montañas Western Ghats hacia el oeste hasta las llanuras. Clusiaceae se informa como una nueva familia de plantas hospedantes para Blepharida -grupo de especies, con Garcinia gummi-gutta (L.) N. Robson (Clusiaceae) como planta hospedante de Podontia congregata . Los insectos pentatómidos atacan a las larvas pero no a los huevos, pupas o adultos. Una nueva especie de parasitoide de huevos, Ooencyrtus keralensis Se descubrió Hayat y Prathapan, 2010 (Hymenoptera: Encyrtidae). Aspectos de Podontia congregata La selección del huésped, el ciclo de vida y las defensas fecales de las larvas son consistentes con su inclusión en el Blepharida -grupo de género.

Escarabajos de las hojas, Podontia congregata, Plaga, Garcinia, Clusiaceae, India

los Blepharida -grupo de géneros formado por escarabajos pulga robustos y de colores brillantes (Figs. 1-10). Furth (1998) enumera 16 géneros en el Blepharida -grupo, que están unidos por caracteres de la forma del ojo, morfología metatibial, edeagal y espermatecal. Medvedev (1999) agregó tres nuevos géneros, Asiophrida Medvedev, Blepharella Medvedev y Furthia Medvedev de la región oriental, con un total de 19 géneros. los Blepharida -grupo tiene una distribución tropical principalmente del Viejo Mundo, con la excepción de Euplectroscelis La entrepierna es endémica de México (Furth 1992 Furth y Lee 2000). Seguimos a Furth y Lee (2000: 27, Tabla 1) sobre la composición de la Blepharida géneros de grupo, ya que esta es la discusión más reciente de estos géneros, basada en sus discusiones morfológicas y clasificatorias (Furth 1992, 1998) y señalando las limitaciones de las filogenias de catálogo. Se necesita urgentemente un análisis filogenético moderno de las relaciones entre estos taxones y con otros escarabajos pulga.

Habitus de adultos de Blepharida -grupo general, tamaño & lt2 cm de largo. 1. Asiophrida marmorea (Wiedemann) (foto de C.-w. Shin). 2. Blepharida rhois (Forster) (foto de C.-w. Shin). 3. Blepharida vittata Baly (foto de C.-w. Shin). 4. Crimissa cruralis Stål (Foto de M. Tavares). 5. Diamphidia femoralis Gerstaecker (foto de C.S. Chaboo). 6. Ophrida spectabilis (Baly) (foto de C.-w. Shin). 7. Podontia affinis (Gröndal) (foto de C.-w. Shin). 8. Podoncia lutea (Olivier) (foto de C.-F. Lee). 9. Podoncia rufocastanea Baly (foto de C.-w. Shin). 10. Polyclada flexuosa Baly (foto de C.S. Chaboo).

Especies en el Blepharida -grupo se documentan más comúnmente en plantas hospedantes en Anacardiaceae, Bignoniaceae, Burseraceae y Sapindaceae (Tabla 1). Sin embargo, hay varios registros de especies individuales de Apocynaceae, Caesalpiniaceae, Elaeocarpaceae, Fabaceae, Lythraceae, Meliaceae, Moraceae y Verbenaceae, que plantean preguntas interesantes sobre la evolución de la dieta, así como la posibilidad de informes de huéspedes cuestionables. Además, Furth (1998) indicó cómo la falta de fuentes de referencia en Jolivet y Hawkeswood (1995) podría inducir a error sobre las verdaderas asociaciones entre crisomélidos y plantas. Es probable que la química del huésped haya jugado un papel importante en la coevolución de Blepharida Chevrolat (73 especies, Figs. 2-3) con sus huéspedes en Bursera Jacq. ex L. (Burseraceae) (Becerra 1997, 2003, 2004a, b, 2007 Becerra y Venable 1999 Becerra et al. 2001). Los metabolitos secundarios adquiridos por el hospedador también parecen contribuir a la eficacia de una defensa fecal larvaria inusual en Blepharida (Morton 1997 Morton y Vencl 1998 Vencl y Morton 1998, 1999).

Furth y Lee (2000) proporcionaron una síntesis morfológica de la Blepharida -grupo, e informó que los datos morfológicos para las etapas inmaduras estaban disponibles para sólo nueve especies en Blepharida Chevrolat, Diamphidia Gerstaecker, Euplectroscelis Entrepierna, Ophrida Chapuis, y Podoncia Dalman. Dentro de este grupo más amplio, Takizawa (2005) reconoció una Podoncia -grupo de género compuesto por Blepharida (Figuras 2-3), Ofrida (Fig.6) y Podoncia (Figs. 7-9), basado en patrones de setas larvarias y depósito de huevos en filas. Chaboo y col. (2007) agregaron datos para tres especies más en los géneros del sur de África Diamphidia y Polyclada Chevrolat y Lee y Cheng (2007) agregaron datos para dos especies taiwanesas: Ophrida spectabilis (Baly) y Podoncia lutea (Olivier) (Figuras 6 y 8 respectivamente).

En Blepharida , Diamphidia , Podoncia , y Polyclada , las larvas retienen sus heces directamente en el dorso. Este recubrimiento actúa como un disuasivo para atacar a enemigos como las hormigas (Vencl y Morton 1998, 1999). La capa fecal también puede servir para moderar la temperatura corporal o para reducir la pérdida de agua, pero sus funciones no han sido probadas. La retención fecal y el ano posicionado dorsalmente representan caracteres complejos que apoyan la monofilia de la Blepharida -grupo (Paterson 1943).

El genero Podoncia Dalman 1824 (Figs. 7-9) comprende 14 especies asiáticas que van desde Indonesia hasta Indochina, con una especie que se encuentra en el norte de Australia (Baly 1865 Heikertinger y Csiki 1940). Podoncia los adultos se distinguen de otros Blepharida -agrupa las especies por bifurcado prosternum, mesosternum en forma de silla de montar y garras tarsales bífidas fuertemente curvadas hacia adentro (Medvedev 1999 Becerra 2004a). Podoncia las larvas varían en presencia y forma de tubérculos meso y metatorácicos (Kimoto y Takizawa 1997). Las etapas inmaduras son conocidas solo por Podontia affinis (Gröndal) (Fig.7 Takizawa 1978 Furth y Lee 2000), Podontia dalmani Baly (Furth y Lee 2000) y Podoncia lutea (Olivier) (Fig.8 Takizawa 1978 Jolivet y Hawkeswood 1995 Kimoto y Takizawa 1997 Lee 1999 Furth y Lee 2000). Con adultos en

2 cm de largo, Podoncia lutea , el escarabajo de la hoja dorada, es supuestamente el escarabajo pulga más grande del mundo (Fig. 8 Furth 1999).

A continuación, revisamos la biología de Podoncia y otra Blepharida géneros de grupo y proporcionan el primer relato de historia natural de Podontia congregata Baly, 1865. Endémica del sur de los Ghats occidentales y áreas adyacentes, Podontia congregata es el escarabajo pulga más grande del sur de la India, con una longitud de entre 11,5 y 14,7 mm. Nuestro estudio se basa en observaciones de campo y de laboratorio.

Plantas hospedantes de especies del Blepharida -grupo. Los registros cuestionables conocidos se indican con "(?)". Los nombres de las plantas siguen el Índice Internacional de Nombres de Plantas (2011).

Especies Planta huésped Referencia
Asiophrida Medvedev
Asiophrida marmorea (Wiedemann) Anacardiaceae: Espondias L. spag. Furth y Lee 2000
Apocynaceae: Holarrhena pubescens Pared. (=antidisenterica (L.) Muro) Stebbing 1914 Maulik 1926 Takizawa 1978 Medvedev 1999
Burseraceae: Garuga pinnata Roxb. Mathew y Mohandas 1989
Garuga Roxb. sp. Medvedev 1999
Asiophrida (Trichophrida) hirsuta (Wiedemann) Burseraceae: Boswellia serrata Roxb. ex Colebr. Stebbing 1914 Maulik 1926 Scherer 1969 Medvedev 1999
Asiophrida scaphoides (Baly) Anacardiaceae: Rhus L. Medvedev 1999
Burseraceae: Canario L. Medvedev 1999
Blepharida Chevrolat Anacardiaceae Furth 1999 Furth y Lee 2000
Anacardiaceae: Cotino Molino. Jolivet y Hawkeswood 1995
Rhus L. sp. Jolivet y Hawkeswood 1995 Scherer 1973 Furth 1998
Schinus L. sp. Jolivet y Hawkeswood 1995
Burseraceae Furth 1999 Furth y Lee 2000 Newbold et al. 2007
Bursera Jacq. ex L. Becerra y Venable 1999 Becerra et al. 2009 Noge y Becerra 2009 Becerra 1994, 1997, 2003, 2007 Jolivet y Hawkeswood 1995 Becerra y Venable 1999 Jolivet y Verma 2002 Becerra et al. 2009
Bursera schlechtendalii Engl. Becerra 1994 Becerra y Venable 1990 Becerra et al. 2001
Burseraceae: Commiphora Jacq. sp. Becerra 2003
Sapindaceae: Alophylus L. sp. Jolivet y Hawkeswood 1995
Matayba Aubl. Jolivet y Hawkeswood 1995
Blepharida alternata Jacoby Bursera arborea L. Riley Furth 1998 Becerra 2007
Bursera attenuata L. Riley Furth 1998 Evans y col. 2000 Becerra y col. 2001, Becerra 2004a, b 2007
Bursera bicolor Engl. Becerra 2004a, b, 2007
Bursera chemapodicta Rzed. y E. Ortiz Furth 1998 Evans y col. 2000 Becerra y col. 2001 Becerra 2004a, b, 2007
Bursera citronela McVaugh y amp Rzed. Becerra 2007
Bursera cuneata Engl. Becerra 2004a, b, 2007
Bursera excelsa Engl. Becerra 2004a, b, 2007
Bursera fragilis S. Watson Furth 1998 Evans y col. 2000 Becerra y col. 2001 Becerra 2004a, b, 2007
Bursera heteresthes Toro castrado Becerra 2007
Bursera instabilis McVaugh y amp Rzed. Becerra 1997, 2004a, b, 2007 Furth 1998 Evans et al. 2000 Becerra y col. 2001
Bursera palmeri S. Watson Furth 1998 Becerra 2004a, b, 2007
Bursera submoniliformis Engl. Furth 1998 Becerra 2004a, b, 2007
Blepharida atripennis bocina Bursera epinnata (Rosa) Engl. Furth 1998 Lee 1999 Furth y Lee 2000
Bursera odorata T.S. Brandeg Furth 1998 Evans y col. 2000 Becerra y col. 2001 Becerra 2004a, b, 2007
Bursera ruticola Pérez-Navarro Becerra 2004a, b, 2007
Blepharida balyi Bryant Bursera copallifera (Sessé & amp Moc. Ex DC.) Bullock Furth 1998 Evans y col. 2000 Becerra y col. 2001 Becerra 2004a, b, 2007
Bursera bipinnata (DC.) Engl. Furth 1998 Becerra y Venable 1999 Becerra 2004a, b, 2007
Bursera decolorar Rzed. Furth 1998 Becerra 2004a, b, 2007 Becerra y Venable 1999
Bursera diversifolia Rosa Furth 1998 Becerra 2004a, b, 2007
Bursera Jacq. ex L. sp. Furth 1998
Blepharida bryanti Furth Bursera excelsa (Kunth) Engl. Furth 1998 Evans y col. 2000 Becerra y col. 2001 Becerra 2004a, 2007
Blepharida condrasi (Weise) Rhus tripartita (Ucria) Grande Furth y Young 1988
Blepharida conspersa (Bocina) Bursera epinnata (Rosa) Engl. Furth 1998 Becerra 2004a, b, 2007
Bursera filicifolia T. S. Brandeg. Furth 1998 Becerra 2004a, b, 2007
Bursera hindsiana Engl. en DC. Becerra 2004a, b, 2007
Blepharida flavocostata Jacoby Bursera aspleniifolia T. S. Brandeg. Furth 1998 Evans y col. 2000 Becerra y Venable 1999 Becerra et al. 2001 Becerra 2003, 2004a, b, 2007
Bursera bicolor Engl. Becerra 2003
Bursera biflora (Rosa) Standl. Furth 1998 Becerra y Venable 1999 Evans et al. 2000 Becerra y col. 2001 Becerra 2003, 2004a, b, 2007
Bursera bipinnata (DC.) Engl. Becerra 2004a, b, 2007
Bursera bonetii Rzed. Furth 1998 Becerra y Venable 1999 Becerra 2003, 2004a, b, 2007
Bursera copallifera (DC.) Bullock Furth 1998 Evans y col. 2000 Becerra y col. 2001
Bursera hintonii Toro castrado Furth 1998 Becerra y Venable 1999 Evans et al. 2000 Becerra y col. 2001 Becerra 2003, Becerra 2004a, b, 2007
Bursera sarukhanii Guevera & amp Rzed. Furth 1998 Evans y col. 2000 Becerra y col. 2001 Becerra 2003, 2004a, b, 2007
Bursera schlechtendalii Engl. Furth 1998
Bursera submoniliformis Engl. Furth 1998 Becerra y Venable 1999 Becerra 2003, Becerra 2004a, b, 2007
Bursera velutina Toro castrado Furth 1998 Becerra y Venable 1999 Evans et al. 2000 Becerra y col. 2001 Becerra 2003, 2004a, b, 2007
Bursera xochipalensis Rzed. Becerra 2004a, b
Blepharida florhi Jacoby Bursera bipinnata (DC.) Engl. Furth 1998 Becerra y Venable 1999 Becerra 2004a, b, 2007
Blepharida gabrielae Furth Bursera aptera Ramírez Evans y col. 2000 Becerra y col. 2001
Bursera decolorar Rzed. Furth 1998 Evans y col. 2000 Becerra y col. 2001 Becerra 2004a, b, 2007
Bursera fagaroides Engl. Furth 1998 Evans y col. 2000 Becerra y col. 2001 Becerra 2004a, b, 2007
Bursera paradoxa Guevera & amp Rzed. Furth 1998 Evans y col. 2000 Becerra y col. 2001 Becerra 2004a, b, 2007
Bursera trifoliolata Toro castrado Furth 1998 Evans y col. 2000 Becerra y col. 2001 Becerra 2004a, b, 2007
Bursera Jacq. ex L. sp. Furth 1998
Blepharida hinchahuevosi Furth Anacardiaceae: Pseudosmodingium perniciosum (Kunth) Engl. Furth 1998 Becerra 2004a, b
Blepharida humeralis Furth Bursera submoniliformis Engl. Furth 1998 Becerra y Venable 1999 Becerra 2004a, b, 2007
Blepharida irrorata Chevrolat Sapindaceae: Allophylus cominia Sudoeste. Brunner y col. 1975 Furth 1998 Takizawa 2003 Becerra 2004a
Allophylus occidentalis Radlk. Brunner y col. 1975 Furth 1998 Takizawa 2003 Becerra 2004a
Matayba Aubl. Wolcott 1936 Furth 1998 Takizawa 2003 Becerra 2004a
Bursera simaruba (L.) Sarg. Furth 1998 Takizawa 2003 Becerra 2004a
Blepharida johngi Furth Bursera glabrifolia (Kunth) Engl. Furth 1998 Becerra 2004a, 2007
Bursera Jacq. ex L. sp. Furth 1998
Blepharida judithae Furth Bursera ariensis (Kunth) McVaugh y amp Rzed. Furth 1998 Becerra y Venable 1999 Becerra 2004a, b, 2007
Blepharida lineata Furth Bursera crenata P. G. Wilson Furth 1998 Evans y col. 2000 Becerra y Venable 1999 Becerra et al. 2001 Becerra 2003, 2004a, b, 2007
Bursera denticulata McVaugh y amp Rzed. Becerra y Venable 1999 Evans et al. 2000 Becerra y col. 2001 Becerra 2003, 2004a, b, 2007
Bursera kerberi Engl. Evans y col. 2000 Becerra y col. 2001 Becerra 2004a, b, 2007
Bursera trimera Toro castrado Furth 1998 Evans y col. 2000 Becerra y Venable 1999 Becerra et al. 2001 Becerra 2003, Becerra
Blepharida maculicollis Furth Bursera submoniliformis Engl. Furth 1998
Bursera xochipalensis Rzed. Becerra 2004a
Blepharida marginalis Weise Rhus natalensis Bernh. ex Krauss, Rhus tripartita CORRIENTE CONTINUA., Rhus vulgaris Meikle Furth y Young 1988
Blepharida melanoptera (Otoño) Bursera infernidialis Guevera & amp Rzed. Furth 1998 Becerra y Venable 1999 Becerra 2004a, b, 2007
Bursera laxiflora S. Watson Furth 1998 Becerra 2004a, b, 2007
Blepharida multimaculata Jacoby Bursera aptera Ramírez Furth 1998 Evans y col. 2000 Becerra y col. 2001 Becerra 2007
Bursera decolorar Rzed. Furth 1998 Evans y col. 2000 Becerra y Venable 1999 Becerra et al. 2001
Bursera fagaroides (Kunth) Engl. Furth 1998 Evans y col. 2000 Becerra y col. 2001 Becerra 2004a, b, 2007
Bursera fagaroides var. purpusii (Brandegee) McVaugh y amp Rzed. Becerra y Venable 1999
Bursera paradoxa Guevera & amp Rzed. Furth 1998 Becerra y Venable 1999
Bursera trifoliolata Toro castrado Furth 1998 Becerra y Venable 1999
Bursera Jacq. ex L. sp. Furth 1998
Blepharida natalensis Baly Rhus lancea L.f. Becerra 2004b
Rhus zeyheri Sond. Scherer 1973
Blepharida nigromaculata Jacoby Rhus L.sp. Becerra 2004b
Blepharida nigrotesselata Baly Rhus L. sp. Paterson 1943
Blepharida pallida Blake Bursera arborea (Rosa) Riley Becerra 2007
Bursera aloexylon (Scheide ex Schlecht.) Engl. Furth 1998 Becerra 2007
Bursera bipinnata (DC.) Engl. Becerra 2007
Bursera coyucensis Toro castrado Furth 1998 Becerra 2004a, b, 2007
Bursera cuneata (Schlecht.) Engl. Furth 1998
Bursera excelsa (Kunth) Engl. Becerra 2007
Bursera glabrifolia Engl. Becerra 2007
Bursera grandifolia (Schlecht.) Engl. Furth 1998 Evans y col. 2000 Becerra y Venable 1999 Becerra et al. 2001 Becerra 2004a, b, 2007
Bursera heteresthes Toro castrado Furth 1998 Becerra 1997, 2007
Bursera instabilis McVaugh y amp Rzed. Becerra 2007
Bursera kerberi Engl. Becerra 2007
Bursera penicillata (DC.) Engl. Becerra 2007
Bursera sarcópoda P. G. Wilson Becerra 2007
Rhus L. spp. Scherer 1973
Blepharida paralela Furth Bursera decolorar Rzedowski Furth 1998 Becerra 2004a, b, 2007
Bursera schlechtendalii Engl. Furth 1998 Becerra y Venable 1999 Becerra 2003, 2004a, b, 2007
Blepharida rhois (Forster) Anacardiaceae: Cotinus obovatus Raf. Sullivan Furth 1998 Becerra 2004a, b
Rhus L. Peterson 1953 Takizawa 1978 Furth 1998, 1999 Becerra 2004b
Rhus aromatica Aiton Mignot 1971 Scherer 1973 Furth 1998
Rhus copallina Linneo Mignot 1971 Frost 1973 Furth 1998 Lee 1999 Furth y Lee 2000
Rhus cotinus Nutt. Riley 1874 Furth 1998
Rhus microphylla Engl. Furth 1998
Rhus trilobata Nutt. Furth 1998
Rhus typhina Linneo Mignot 1971 Scherer 1973 Frost 1973 Furth 1998
Rhus vérnix Linneo Mignot 1971 Frost 1973
Rhus L. spp. Takizawa 1978 Becerra 2004a, b
Schinus terebinthifolius Raddi Frost 1972, 1973 Takizawa 1978 Furth 1998 Becerra 2004a, b
Schinus L. sp. Mignot 1971 Frost 1972, 1973
Apocynaceae: Catharanthus (= Vinca) roseus (L.) G. Don Escarcha 1972
Pinaceae: Pinus palustris Molino. Mignot 1971 Frost 1972
Rosaceae: fresa Mignot 1971
Blepharida sacra (Weise) Rhus natalensis Bernh. ex Krauss Furth y Young 1988
Rhus tenuinervis Engl. & amp Gilg. (no anfitrión) Furth y Young 1988
Rhus tripartita CORRIENTE CONTINUA. Furth 1982, 1985, 2004 Furth y Young 1988 Lee 1999 Furth y Lee 2000
Rhus vulgaris Meikle Furth y Young 1988
Blepharida schlechtendalii Furth Bursera aptera Ramírez Furth 1998 Becerra 2004a, b, 2007
Bursera heteresthes Toro castrado Furth 1998
Bursera schlechtendalii Engl. Furth 1998 Evans y col. 2000 Becerra y Venable 1990, 1999 Becerra et al. 2001 Becerra 2003, 2004a, b, 2007
Blepharida singularis Jacoby Bursera Jacq. ex L.sp. Furth 1998 Becerra 2004a
Blepharida sonorstriata Furth Bursera laxiflora S. Watson Furth 1998 Becerra 2004a, b, 2007
Blepharida sparsa (Clark) Bursera kerberi Engl. Becerra 1997 2004a, b Furth 1998 Evans et al. 2000 Becerra y Venable 1999 Becerra et al. 2001 Becerra 2003, 2007
Bursera submoniliformis Engl. Furth 1998 Becerra 2004a, b, 2007
Bursera Jacq. ex L.sp. Furth 1998
Blepharida unami Furth Bursera fagaroides (H. B. K.) Engl. Furth 1998 Becerra 2004a
Bursera Jacq. ex L. sp. Furth 1998
Blepharida variegatus Furth Bursera submoniliformis Engl. Furth 1998
Blepharida verdea Furth Bursera lancifolia (Schlecht.) Engl. Furth 1998 Becerra 2003, 2004a, b, 2007
Bursera morelensis Ramírez Furth 1998 Becerra y Venable 1999 Evans et al. 2000 Becerra y otros 2001 Becerra 2003, 2004a, b, 2007
Bursera rzedowskii C. A.Toledo Furth 1998 Becerra 2003, 2004a, b, 2007
Blepharida vittata Baly Rhus L. sp. Becerra 2004b
Blepharida xochipala Furth Bursera mirandae CALIFORNIA. Toledo Furth 1998, Becerra 2004a, b, 2007
Bursera Jacq. ex L.sp. Furth 1998
Blepharida sp. Bursera cuneata (Schlecht.) Engl. Evans y col. 2000 Becerra y col. 2001
Blepharida sp. Bursera schlechtendalii Engl. Becerra y Venable 1990 Becerra 1994
Blepharida sp. Pseudoosmodingium perniciosum (Kunth) Engl. Furth 1999
Blepharida sp.1 Bursera glabrifolia Engl. Becerra 2004b, 2007
Blepharia sp. 2 Bursera chemapodicta Rzed. & amp Ortiz Becerra 2004b, 2007
Blepharida sp. 3 Bursera vejar-vazquezii Miranda Becerra 2004b, 2007
Blepharida sp. 4 Bursera biflora (Rosa) Standl. Becerra 2004b, 2007
Bursera longipes (Rosa) Standl. Becerra 2004b, 2007
Blepharida sp. 5 Bursera xochipalensis Rzed. Becerra 2004b, 2007
Blepharida sp. 1a Rhus L.sp., Commiphora Jacq.sp. Becerra 2004b
Blepharida sp. 2a Bignoniaceae: Rhizogum ebovatum? Becerra 2004b
Blepharida sp. 3a Commiphora mollis (Oliv.) Engl. Becerra 2004b
Blepharida sp. 6 Bursera ribana Rzed. & amp Calderón Becerra 2007
Blepharida sp. 7 Bursea suntui CALIFORNIA. Toledo Becerra 2007
Crimissa Stål Anacardiaceae (?) Furth y Lee 2000
Anacardiaceae: Anacardium L. Mangifera L. Jolivet y Hawkeswood 1995
Crimissa cruralis Stål Anacardium occidentale L. Bastos 1975 Bastos 1977b Bastos y Vieira 1977a, b Santos y Vieira 1977 Sales y Pereira 1978 Bastos et al. 1979 Sales et al. 1981 Tandon y Verghese 1985 Marques et al. 1992
Crimissa sp. Anacardium occidentale L. Santos 1972
Bignoniaceae Jolivet y Hawkeswood 1995
Diamphidia Gerstaecker Burseraceae Furth y Lee 2000
Commiphora Jacq. sp. Jolivet y Hawkeswood 1995 Furth 1998, 1999 Becerra 2003
Diamphidia femoralis Gerstaecker Commiphora Jacq. sp. Becerra 2004b Chaboo y col. 2007
Diamphidia nigroornata Stål Commiphora Jacq. sp. Chaboo y col. 2007
Commiphora africana (A. Rich.) Engl. Becerra 2004b
Commiphora angolensis Engl. Neuwinger y Scherer 1976 Neuwinger 1996
Commiphora glandulosa Schinz Becerra 2004b
Diamphidia simplex Péringuey Commiphora africana (A. Rich.) Engl. Roodt 1993 Nonaka 1996
Diamphidia vittatipennis Baly Commiphora africana (A. Rich.) Engl. Neuwinger y Scherer 1976 Neuwinger 1996 Becerra 2004b
Commiphora tenuipetiolata Engl. Becerra 2004b
Diamphidia sp. Sclerocarya caffra Sond. Furth y Lee 2000
Elithia Chapuis Anacardiaceae Furth y Lee 2000
Euplectroscelis Entrepierna Burseraceae Furth y Lee 2000
Bursera Jacq. ex L. sp. Furth 1998
Bursera microphylla Un gris Becerra 2004a
Euplectroscelis xanti Entrepierna Bursera microphylla Un gris Becerra 2004b, 2007
Bursera odorata Brandegee Furth y Lee 2000
Notozona Chevrolat Anacardiaceae (?) Furth y Lee 2000
Rhus L. sp. (?) Furth 1998
Burseraceae Furth y Lee 2000
Bursera Jacq. ex. L.sp. Becerra 2004a
Notozona histrionica Chevrolat Bursera simaruba (L.) Sarg. Becerra 2004b, 2007
Notozona nicaraguensis Jaq. Bursera simaruba (L.) Sarg. Flores y Janzen 1997
Ofrida Chapuis Anacardiaceae Furth 1998 Furth y Lee 2000
Apocynaceae Jolivet y Hawkeswood 1995
Burseraceae Furth 1998 Furth y Lee 2000
Boswellia Roxb. ex. Colebr., Canario L., Garuga Roxb. Jolivet y Hawkeswood 1995
Ophrida hirsuta Stebbing Boswellia serrata Roxb. Stebbing 1914 Beeson 1919, 1941 Takizawa 1978
Ophrida nigrovaria (MacLeay) Canarium australianum F. Muell. Furth 1998
Ophrida scaphoides (Baly) Anacardiaceae: Rhus Successdanea L. Kimoto y Takizawa 1997
Burseraceae: Canario L. Medvedev y Dap 1982
Ophrida spectabilis (Baly) Anacardiaceae: Rhus chinensis Molino. Nuez de agalla, zumaque Yang y col. 1997 Bilun 1998a Wang et al. 1998 Wu y col. 1999 Lee y Cheng 2007
Rhus punjabensis J.L. Stewart Wang y col. 1998
Rhus trichocarpa Miq. Zhang y Yang 2008
Rhus verniciflua Stokes Zhang y Yang 2008
Oprhida xanthospilota (Baly) Continus coggygria Scop. Zhao 1985 Furth 1998 Zhang y Yang 2008
Podoncia Dalman Anacardiaceae Furth 1998 Furth y Lee 2000
Anacardiaceae: Mangifera L., Rhus L., Espondias L., Toxicodendron Molino. Jolivet y Hawkeswood 1995
Rhus L. Becerra 2003
Burseraceae Furth 1998 Furth y Lee 2000
Burseraceae: Canario L. Jolivet y Hawkeswood 1995
Caesalpiniaceae (?) Jolivet y Hawkeswood 1995
Elaeocarpaceae: Elaeocarpus L. sp. Jolivet y Hawkeswood 1995
Moraceae: Ficus L.sp. (?) Jolivet y Hawkeswood 1995
Theaceae: La A L. sp. (?) Jolivet y Hawkeswood 1995
Podontia affinis (Gröndal) Anacardiaceae: Espondias L. sp. Kalshoven 1951
Spondias dulcis Forster Mohamedsaid 1989, 2004 Medvedev 1999
Podontia congregata Baly Clusiaceae: Garcinia gummi-gutta (L.) N. Robson Nuevo registro familiar, este documento
Podontia dalmani Baly Meliáceas: Melia L.sp. Medvedev 1999
Caesalpiniaceae Medvedev y Dap 1982 Medvedev 1999
Podoncia lutea (Olivier) Canario L. sp. Medvedev y Dap 1982 Medvedev 1999
Anacardiaceae: Rhus L. sp. Hsu 1934a, b Furth 1998 Medvedev 1999
Rhus Successdanea L. Chujo 1935 Takizawa 1978 Kimoto y Takizawa 1997
Toxicodendron Molino. sp. Medvedev y Dap 1982 Medvedev 1999
Podontia quatuor-decimpunctata (L.) Anacardiaceae: Mangifera L. sp. Furth 1998
Espondias L. sp. Kalshoven 1951 Takizawa 1978 Medvedev 1999
Spondias cyatherea Sonn. Yunus y Hua 1980 Daulmerie 1994 Furth 1998
Spondias dulcis Forster Corbett y Yusope 1921 Maulik 1926 Bose 1953 Scherer 1969 Pramanik y Basu 1973 Mohamedsaid 1989, 2004 Singh y Misra 1989 Baksha 1997 Medvedev 1999
Spondias pinnata (L.f.) Kurz (= Spondias mangifera Willd.) Barlow 1900 Maxwell-Lefroy 1909 Stebbing 1914 Beeson 1919, 1941 Bose 1953 Scherer 1969 Pramanik y Basu 1973 Husain y Ahmad 1977 Sardar y Mondal 1983 Singh y Misra 1989 Howlader 1993 Baksha 1997 Deka y Kalita 1999, 2002a, b, c, d, 2003 , 2004 Hossain et al. 2004
Burseraceae: Canario L. Yunus y Hua 1980 Furth 1998
Moraceae: Ficus elastica Roxb. ex Hornem. Stebbing 1914 Beeson 1919, 1941 Scherer 1969 Baksha 1997 Singh y Misra 1989
Ficus L. Medvedev 1999
"Árboles frutales" (nativos e importados) Fletcher 1920, 1921 Susainathan 1923
Lythraceae: Duabanga grandiflora Walp Singh y Misra 1989 Baksha 1997
Lythraceae: Duabanga sonneratioides Buch. Ahmad 1939 Beeson 1941 Bose 1953
Lythraceae: Sonneratia apetala Buch.-Ham. http://banglapedia.search.com.bd/HT/B_0385.html
Podontia soriculata (Swartz) Thea boheae (?) Swartz 1808 Gressitt y Kimoto 1963
Polyclada Chevrolat Anacardiaceae Roodt 1993 Jolivet y Hawkeswood 1995 Furth 1998 Furth y Lee 2000
Pseudoespondias Engl. Jolivet y Hawkeswood 1995
Rhus L. Shaw y col. 1963
Sclerocarya caffra Sond. Jolivet y Hawkeswood 1995 Shaw et al. 1963
Esclerocarya birrea (A.Richt.) Hochst. Roodt 1993 Furth 1998 Chaboo y col. 2007
Burseraceae: Commiphora Jacq. Furth 1999
Fabaceae: Dalbergia L. sp. (?) Jolivet y Hawkeswood 1995
Verbenaceae: Clerodendrum L. sp. (?) Jolivet y Hawkeswood 1995
Polyclada flexuosa Baly Esclerocarya birrea sub. sp. caffra Sonder Shaw y col. 1963 Neuwinger y Scherer 1976 Neuwinger 1996
Procalus Clark Anacardiaceae Jerez 1995 Furth y Lee 2000 Jolivet y Verma 2002
Lithraea Miers ex Hook. & amp Arn., Schinus L. Furth 1998
Lithraea caustica (Molina) Gancho. & amp Arn. Jerez 1995, 1999 Jolivet y Hawkeswood 1995
Schinus latifolius Engl. Jerez 1995, 1999 Jolivet y Hawkeswood 1995
Schinus montanus Engl. Jerez 1995, 1999 Jolivet y Hawkeswood 1995
Schinus patagonicus (Fil.) I.M. Johnst. Jerez 1995, 1999
Schinus polygamus (Cav.) Cabrera Jerez 1992, 1995, 1999 Jolivet y Hawkeswood 1995
Schinus velutinus (Turcz.) I.M. Johnst. Jerez 1995 1999
Procalus lenzi (Harold) Lithraea caustica (Molina) Gancho. & amp Arn. Grez 1988 Jerez 1992
Schinus polygamus (Cav.) Cabrera Jerez 1992
Procalus malaisei Bechyné Lithraea caustica (Molina) Gancho. & amp Arn. Etchegarry y Fuentes 1980 Fuentes et al. 1987 Poiani 1989 Grez 1988 Jerez 1992
Procalus mutans (Blanchard) Lithraea caustica (Molina) Gancho. & amp Arn. Jerez 1992
Schinus montanus Engl. Jerez 1992
Procalus reduplicatus Bechyné Lithraea caustica (Molina) Gancho. & amp Arn. Jerez 1992
Procalus silvai Jerez Schinus patagonicus (Fil.) I.M. Johnst. Jerez 1995
Procalus viridis (Philippi & amp Philippi) Lithraea caustica (Molina) Gancho. & amp Arn. Fuentes y col. 1987 Poiani 1989
Schinus latifolius Engl. Krauss 1962, 1963 Jerez 1985, 1988, 1992 Poiani 1989
Schinus montanus Engl. Jerez 1992
Schinus polygamus (Cav.) Cabrera Filipos y Filipos 1864 Jerez 1985, 1992 Poiani 1989

La biología para la mayoría Podoncia la especie es desconocida, sin embargo, los datos de hospedadores Podontia affinis , Podoncia lutea , y Podontia quatuordecimpunctata (Linnaeus) indican que estas especies defolian severamente los árboles anacardíacos. Por ejemplo, Podontia affinis (kedongdong spring-beetle) se extiende desde Indonesia hasta China y es una plaga en Indonesia, donde sus larvas atacan el follaje de Spondias dulcis Forster (Anacardiaceae = Spondias cytherea Sonn., Ambarella o árbol kedongdong Daulmerie 1994 Morton 1987). Mujer Podontia affinis viven alrededor de 3 meses, ponen grupos sueltos de huevos en el envés de las hojas y los recubren con alguna sustancia (Kalshoven 1951). Las larvas son parasitadas por una avispa encyrtid, Ooencyrtus podontiae (Gahan) (Cuadro 2 Gahan 1922 Kalshoven 1951).

El escarabajo de la hoja dorada, Podoncia lutea es de gran tamaño

2 cm, Fig.8) y su atractiva coloración favorece su uso en joyería Lucite barata. Los limitados datos disponibles indican biología como otros Blepharida -miembros del grupo (Hsu 1934a, b Lee 1999 Furth y Lee 2000). Este escarabajo es una plaga del arbusto anacardíaco, Toxicodendron vernicifluum (Stokes) F.Barkley (= Rhus verniciflua Stokes), que es la fuente de laca utilizada en la fabricación de muebles asiáticos (Li y Wang 1984a, b). El escarabajo coccinélido, Aiolocaria mirabilis (Motschulsky), se ha estudiado como agente de control biológico (Li y Wang 1984a, b).

Podontia quatuordecimpunctata es el mas conocido Podoncia especie porque tanto los adultos como las larvas defolian el árbol Spondias dulcis . Este árbol, comúnmente conocido como mak-ok, ciruela de cerdo o manzano dorado, se cultiva por sus frutos comestibles en Indonesia, Malasia, India, Tailandia y el Caribe (Figs. 11-15 Tabla 1 y referencias allí). Pramanik y Basu (1973) describieron por primera vez la Podontia quatuordecimpunctata ciclo de vida (Ver también Singh y Misra 1989). Igual que Podontia affinis , el estado de plaga de esta especie ha llevado al uso de un nombre vernáculo, "kadondong beetle" (ortografía alternativa "kedongdong" Corbett y Yusope 1921), que se asemeja al de Podontia affinis (Morton 1987). Los adultos de color rosa anaranjado están activos de junio a octubre y forman parejas que copulan varias veces (Fig. 12). [Se pueden ver imágenes adicionales de los escenarios en vivo en: http://greeneyesth.multiply.com/photos/album/33/Podontia_quatuordecimpunctata].Las hembras depositan de 20 a 60 huevos en racimos en la superficie de la hoja. Los huevos son de color amarillo brillante, desnudos y están dispuestos en múltiples capas, generalmente dos. La eclosión ocurre dentro de los 7 a 8 días y los estadios larvarios de color amarillo-marrón se alimentan gregariamente y prefieren las hojas más jóvenes (Singh y Misra 1989). Barlow (1900) indicó que los cinco estadios larvarios retienen una capa fecal (Figs. 13-14), posiblemente imitando excrementos de aves (Barlow 1900 Stebbing 1914 Baksha 1997). El último estadio desciende de la planta, ingresa al suelo y forma una celda de tierra en la que se convierte en crisálida. Las pupas de color marrón amarillento duran de 14 a 29 días. Los adultos hibernan en el suelo o debajo de las hojas. Los enemigos de insectos (por ejemplo, Fig.15), nematodos y hongos están documentados (Tabla 2 Singh y Misra 1989). Las aspersiones foliares de cipermetrina (Baksha 1997), metatión (Sardar y Mondal 1983) y carbarilo (Singh y Misra 1989) se han recomendado como controles efectivos.

Podontia quatuordecimpunctata en el árbol anfitrión, Spondias dulcis Forster (Anacardiaceae mak-ok, ambarella, kedongdong) en Tailandia 11 Planta huésped 12 El adulto colorido,

2 cm de largo 13 Una larva completamente cubierta por heces. 14 Larva, parcialmente cubierta por heces 15 Un insecto pentatómido juvenil (Heteroptera: Pentatomidae) atacando una larva cubierta de heces, con el pico insertado a través de la cubierta fecal. (Fotos de S. Damrongsiri).

Asiophrida Medvedev comprende 20 especies en tres subgéneros (Medvedev 1999 Zhang y Yang 2008 Mohammedsaid 2004). Uno de nosotros (KDP) descubrió recientemente poblaciones de Asiophrida marmorea (Wiedemann) en un host conocido, Garuga pinnata Roxb. (Burseraceae Tabla 1) en Vellanikkara, Kerala, sur de la India (Fig. 1). Las larvas están desnudas, no retienen las cubiertas fecales. Se está realizando un estudio de campo.

La biología de Blepharida , con 55 especies, es actualmente la más conocida entre Blepharida -grupo de géneros. Los datos del ciclo de vida se han publicado para Blepharida rhois (Forster) (como Blepharida dorothea Mignot) (Frost 1972). Blepharida evanida (Baly) se informa como una fuente de veneno para flechas utilizado por los bosquimanos del Kalahari San (Lewin 1912, 1923). Furth (1982, 1985) resumió la biología de Blepharida sacra (Weise), el escarabajo pulga sagrado del zumaque. Generalmente, Blepharida los adultos ponen racimos de huevos en las ramas y los cubren con materia fecal. Las larvas con forma de babosa retienen heces blandas o hebras fecales largas o gránulos en condiciones más secas. Las fases prepupal y pupal se encuentran bajo tierra en células de tierra y pueden durar más de 7 meses. Los huevos son parasitados por la avispa eulófida, Tetrastichus sp., mientras que las larvas son atacadas por el parasitoide de la mosca, Meigenia mutabilis Caído (Diptera: Tachninidae Furth 1985).

Crimissa cruralis Stål, el escarabajo rojo del anacardo, es una plaga importante del anacardo cultivado en Brasil, Anacardium occidentale L. (Fig. 4 Pereira et al. 1975 Bastos 1975, 1977a Bastos y Vieira 1977a, b Bastos et al. 1979). Los huevos se depositan en los árboles, las larvas comen de las hojas y los adultos raspan y dejan lesiones características en la superficie de las hojas (Pereira et al. 1975). La pupación es subterránea en capullos basados ​​en el suelo cerca de la base del tronco (Santos 1972 Bastos 1977b Santos y Vieira 1977 Sales y Pereira 1978). La morfología de las etapas inmaduras aparentemente no está descrita. Se han probado varios productos químicos (Bastos 1975 Bastos y Veira 1977a, b Bastos et al. 1979) y exudados de goma de anacardo (Marques et al. 1992) para controlar esta plaga.

Las nueve especies conocidas de Diamphidia se distribuyen a lo largo de la costa oriental desde Etiopía hasta Sudáfrica y Namibia (Fig. 5 Baly 1865 Heikertinger y Csiki 1940). Varias especies de Diamphidia están implicados como fuentes del veneno de flecha Kalahari San (Lewin 1923 Roodt 1993 Neuwinger 1996). Diamphidia la biología es similar a la de otros Blepharida -miembros del grupo con la excepción de que la mayoría de las especies tienen huéspedes leñosos en Burseraceae ( Commiphora Jacq.) O Anacardiaceae ( Esclerocarya Hochst.) (Tabla 1 Chaboo et al. 2007).

El género austral-oriental Ofrida Chapuis consta de cuatro o cinco especies (Medvedev 1999 Zhang y Yang 2008). La biología inmadura es conocida por Ophrida scaphoides (Baly) (Kimoto y Takizawa 1997), Ophrida spectabilis (Baly) (Bilun 1998a Park y Lee 2001 Lee y Cheng 2007), y Ophrida xanthospilota (Baly) (Bai y Zhang 1990 Zhang y Yang 2008). Parece haber una generación por año, y los huevos pasan el invierno en las ranuras de las ramitas del hospedador (Park y Lee 2001) o en los troncos del hospedador (Bilun 1998a, b). Los tres estadios larvarios son gregarios y retienen las cubiertas fecales. Las larvas maduras descienden de la planta y construyen capullos de tierra bajo tierra; a unos 20 cm de profundidad, la pupación tarda unos dos meses (Bilun 1998a). Ophrida spectabilis se especializa en Rhus Linnaeus (Park y Lee 2001) y es una plaga de Rhus chinensis Molino. (Bilun 1998a Yang et al. 1997) y Rhus punjabensis J. L. Stewart (Wang y col. 1998). Rhus chinensis , o zumaque chino, es la fuente de las agallas (o agallas) estas "nueces" son taninos extruidos que se endurecen y se utilizan en la medicina tradicional china (Bilun 1998a, b). El valor médico de la planta ha llevado al desarrollo de productos químicos y de biocontrol medidas que incluyen la eliminación de huevos y larvas del huésped (Bilun 1998b), aplicaciones de polvo que contienen Beauveria bassiana (Bals.-Criv.) Vuill. (Hongos: Clavicipitaceae) (Yang et al. 1997 Wu et al. 1999), y la propagación de una avispa parasitoide de huevos, Trichogramma Westwood (Hymenoptera: Trichogrammatidae Yang et al. 1997 Bilun 1998a, b Wang et al. 1998). En China, Ophrida xanthospilota es una plaga del anacard Cotinus coggygria Scop. (Bai y Zhang 1990).

Las 12 especies de Polyclada Chevrolat se distribuyen a lo largo de África oriental, desde Sudáfrica hasta la Península Arábiga (Heikertinger y Csiki 1940 Bryant 1942 Chaboo en revisión). Curiosamente, también se reportan algunas especies de Senegal, lo que sugiere una distribución más amplia de especies, identificaciones erróneas o posiblemente una aplicación inexacta de conceptos genéricos. Hasta donde se sabe, todas las larvas retienen heces (Chaboo et al. 2007). Las larvas tardías del cuarto estadio de algunas especies son desenterradas, aplastadas y su hemolinfa es aplicada a flechas de caza por los san (bosquimanos) en Namibia y Botswana (Neuwinger y Scherer 1976 Roodt 1993 Chaboo et al. 2007 Chaboo 2011).

El género sudamericano Procalus Clark comprende nueve especies que están asociadas con Anacardiaceae (Cuadro 1 Jerez 1992, 1995, 1999). Dos especies son defoliadores importantes de plantas económicamente importantes en el hábitat subandino "matorral" (matorral mediterráneo) (Fuentes et al. 1987). En Hawai, Podontia mutans (Blanchard) se introdujo como agente de control biológico de la baya de Navidad, la maleza Schinus terebinthifolius Raddi (Anacardiaceae) (Krauss 1962, 1963). Viviane Jerez ha descrito la biología de Podontia artigasi Jerez (Jerez 2003), Podontia mutans (Jerez 1999, 2003), Podontia ortizi Jerez (Jerez 2003), Podoncia reduplicatus Bechyné (Jerez 2003), Podontia viridis (Filipos y Filipos) (Jerez 1985, 1988), y Podontia silvai Jerez (Jerez 1995, 2003). Los adultos se vuelven activos a principios de la primavera a finales de la primavera (octubre), las hembras unen grupos de huevos cilíndricos a las hojas y las cubren con una secreción. El ciclo de vida incluye tres estadios larvarios. Las larvas de tercer estadio construyen capullos subterráneos de granos de arena y pasan el invierno hasta nueve meses. Los capullos se encuentran a unos 3 cm bajo tierra en la base de la planta huésped. Larvas de Podontia viridis y Podontia mutans retener los escudos fecales (Jerez 1985, 1999). Se sabe que los nematodos mermitidos son parásitos larvarios (Jerez y Centella 1996).

Etapas inmaduras de Euplectroscelis Entrepierna, Furthia Medvedev, Neoblepharella (Medvedev) [= Blepharella Medvedev, que anteriormente estaba ocupada como un género de moscas taquínidas (Özdikmen 2008)], y Notozona Chevrolat son desconocidos (Medvedev 1999).

Enemigos documentados de Podoncia especies.

Especies Etapa de la vida Enemigo Fuente
Podoncia Huevo, larva Coleópteros: Coccinellidae: Aiolocaria Entrepierna sp. Li y Wang 1984a, b Cox 1994, 1996
Podontia affinis (Gröndal) No indicado Himenópteros: Encyrtidae: Ooencyrtus podontiae (Gahan) Gahan 1922
Huevo Himenópteros: Encyrtidae: Ooencyrtus podontiae (Gahan) Kalshoven 1951
No indicado Nematoda: Mermithidae: Mermis Dujardin sp. Daulmerie 1994
No indicado Sphaeriales: Hypocreaceae: Cefalosporio Corda sp. Daulmerie 1994
Podontia congregata Baly Huevo Himenópteros: Encyrtidae: Ooencyrtus keralensis Hayat y amp Prathapan Hayat y Prathapan 2010
Larva Heteroptera: Pentatomidae: Eucanthecona parva (Distante) Este documento (Figs.22, 23)
Podoncia lutea (Olivier) Huevo, larva Coleópteros: Coccinellidae: Aiolocaria mirabilis (Motschulsky) Li y Wang 1984a, b
Hongos: Laboulbeniales: Laboulbenia podontiae Thaxter Thaxter 1914
Podontia quatuordecimpunctata (Linneo) Adulto Arachnida: araña Lynx Deka y Kalita 2003, 2004
Adulto Aves: Corvus splendens Vieillot Acridotheres tristis (L.) Deka y Kalita 2003, 2004
Huevo, larva Mantodea Deka y Kalita 2003, 2004
Huevo Himenópteros: Braconidae: Apanteles Foerster, Meteoro Haliday Trichogrammatidae: Trichogramma Westwood Deka y Kalita 2003, 2004
Huevo Himenópteros: Chalcididae Corbett y Yusope 1921
Huevo Himenópteros: Eulophidae: Pediobio Walker sp. Baksha 1977
Huevo Himenópteros: Encyrtidae: Ooencyrtus corbetti Ferr. Corbett y Miller 1933 Singh y Misra 1989 Baksha 1997
Larva Heteroptera: Pentatomidae Este documento (Fig.15)
Larva Nematoda: Mermithidae: Mermis Dujardin sp. Singh y Misra 1989 Daulmerie 1994 Baksha 1997
Larva Hongos: Laboulbeniales: Laboulbenia podontiae Thaxter Thaxter 1914
Larva Hongos: Sphaeriales: Hypocreaceae: Cefalosporio Corda sp. Singh y Misra 1989 Daulmerie 1994 Baksha 1997

Uno de nosotros (KDP) estudió poblaciones naturales de Podontia congregata en su árbol anfitrión, Garcinia gummi-gutta, en condiciones de campo durante varias visitas en 2008-2010 en Vallamkulam, Pathanamthitta, Kerala, India. También criamos escarabajos en jaulas para observaciones de laboratorio. Examinamos especímenes de escarabajos obtenidos del Departamento de Entomología, Facultad de Horticultura, Mudigere, India (ver Fig. 16).

Las poblaciones de escarabajos criados en jaulas se mantuvieron en condiciones ambientales en Vellayani, Trivandrum, Kerala, India. Los individuos de estas poblaciones criadas en jaulas se introdujeron en las plantas de campo del hospedador para realizar observaciones. A pesar de que Podontia congregata está ausente en Vellayani, el árbol huésped crece naturalmente en las orillas del lago Vellayani.


Comentario: Agregado al resumen (Página 2)
Estos trabajadores estaban ocupados en el trabajo de limpiar los escombros de un pozo de mina que tenía muchos murciélagos y heces de murciélago 3, 4. Una investigación de salud detallada indicó que los mineros padecían neumonía atípica principalmente de origen viral 4. Por lo tanto, a la luz del actual Covid-19 causado por el SARS-CoV-2, el hecho de que su vecino filogenético RaTG13 se originó a partir de heces de murciélago recolectadas de un pozo de mina, que también fue el origen de una enfermedad similar a la neumonía en los mineros en 2012, debe tenerse en cuenta.
Contenido agregado de la página 4 y la página 5:
también se predijo en una preimpresión 6 y se mencionó en una base de datos china de virus asociados a murciélagos (http://www.mgc.ac.cn/cgi-bin/DBatVir/main.cgi?func=accession&acc=MN996532).
Casos graves de neumonía y muertes en mineros que trabajan en un pozo minero, Mojiang, Yunnan, ChinaEn abril-mayo de 2012, seis mineros participaron en la remoción de escombros de un pozo de mina lleno de murciélagos y heces de murciélago, en la región de Mojiang, Yunnan, China 4. Se observó que después de la exposición a las heces de los murciélagos durante un período de tiempo variable, estos mineros comenzaron a experimentar fiebre y signos de neumonía grave y fueron ingresados ​​en el departamento de emergencias afiliado a la Universidad Médica de Kunming. Una tesis de maestría titulada & lsquoThe análisis de 6 pacientes con neumonía grave causada por virus desconocidos & rsquo describió los detalles del diagnóstico, el tratamiento y las causas probables de las infecciones y muertes 4. Tres de los mineros sucumbieron a la infección y murieron, mientras que tres de ellos sobrevivieron 4. Se diagnosticó que la causa de la neumonía era principalmente de origen viral (relacionada con los murciélagos) y los expertos también observaron infecciones secundarias debidas a hongos o bacterias 4. Las inferencias extraídas en la tesis a partir de los seis mineros fueron que cuanto menor tiempo pasaban los trabajadores en la mina (limpiando las heces de murciélago) y más jóvenes, el pronóstico de estos pacientes era mejor y la estancia hospitalaria era más corta. El tratamiento incluyó el uso de antibióticos antivirales, antibacterianos, antifúngicos, junto con corticoesteroides y fármacos antitrombóticos (en unos pocos pacientes).

Página 7 agregada: Seis mineros que limpiaron los escombros (principalmente heces de murciélago) de los mismos pozos mineros sufrieron de neumonía atípica y tres de ellos murieron. Esta referencia tampoco se ha mencionado en Zhou et al 2020 1. Por lo tanto, a la luz del presente Covid-19 causado por el SARS-CoV-2, el hecho de que su vecino filogenético RaTG13 se originó a partir de heces de murciélago recolectadas de un pozo de extracción, que también fue el origen de una enfermedad similar a la neumonía en los mineros en 2012, debe tenerse en cuenta. Aunque la composición genómica de SARS-CoV-2 y RaTG13 difiere en un 4%, era importante informar y hacer referencia a la muestra exacta y las condiciones de las que se derivó la secuencia de RaTG13 1. Todos estos hechos deben ser considerados a la luz del actual Covid-19, por científicos, médicos y académicos.


Abstracto

Gusano cogollero invasor (FAW), Spodoptera frugiperda (J. E. Smith) (Lepidoptera: Noctuidae) es una plaga de origen estadounidense que ha invadido recientemente países asiáticos, incluida la India. Después de causar enormes pérdidas en África y Asia, el gusano cogollero ahora está afectando grandes áreas de la India. Los enemigos naturales indígenas de las especies de plagas relacionadas son la primera defensa contra las plagas invasoras y comprender su papel en la supresión de la población de plagas invasoras es un primer paso hacia el desarrollo de un programa de manejo integral. Por lo tanto, estudiamos el complejo de enemigos naturales responsable de la mortalidad natural del gusano cogollero en el noreste de la India. Se inspeccionaron varios lugares en cinco distritos principales del estado de Meghalaya, donde se encontraron más de 26 especies de enemigos naturales atacando al gusano cogollero. Se encontró que entre el 56,6% y el 73,1% de las larvas estaban parasitadas o infectadas con entomopatógenos naturales. Se determinó la riqueza de especies y la diversidad de depredadores en campos de maíz en diferentes lugares. Valores del índice de riqueza de especies de Menhinick & # x27s (DMinnesota) varió de 0,23 a 0,31 y el índice de Shannon-Wiener (H) varió de 2,16 a 2,6 en varios lugares. El índice de Simpson (D) indicó una alta diversidad de depredadores en los campos de maíz. El hongo entomopatógeno, Metarhizium rileyi (Farlow) Se observó que Samson y el baculovirus, SpfrNPV eran los factores de mortalidad dominantes a lo largo de la temporada, responsables de & gt50% de mortalidad de las larvas de gusano cogollero. Esta investigación demostró que los enemigos naturales autóctonos de especies relacionadas con los noctuidos pueden ampliar su rango de hospedadores y adoptar exitosamente el gusano cogollero invasor como un nuevo hospedador / presa en las regiones invadidas. Por lo tanto, la conservación de dichos agentes de control biológico podría ser vital para mitigar el daño del gusano cogollero en los agroecosistemas del maíz.


Hojas de trabajo de video

Estos son videos que muestro en clase, ya sea en su totalidad o solo clips. Las hojas de trabajo simplemente hacen preguntas que se pueden responder a medida que avanza la película, lo que ayuda a mantener a los estudiantes concentrados. Los videos se pueden comprar, ver en línea o tomar prestados en su biblioteca local. Con la adición de muchos videos de transmisión en línea, busque el & # 8220ver online& # 8221 etiqueta para videos que se pueden ver gratis.

Entre los chimpancés salvajes & # 8211 la historia de Jane Goodall & # 8217s trabaja con los chimpancés
Animals Behaving Bad & # 8211 una película interesante sobre animales salvajes que hacen cosas malas
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Bill Nye, Genética & # 8211 una lección de historia sobre los principales descubrimientos en genética, incluidos Mendel, Thomas Morgan, Watson y Crick, y el Proyecto Genoma Humano.

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Ranas: La delgada línea verde & # 8211 se centra en las razones de la disminución de las poblaciones de ranas y las medidas que se están tomando para salvarlas.

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Dog Tales & # 8211 NOVA & # 8211 esta es una versión más nueva de & # 8220Dogs Decoded & # 8221 y cubre los mismos temas.

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Rat Attack & # 8211 muestra una plaga de ratas que ocurre en momentos predecibles, bueno para mostrar el método científico y cómo los investigadores determinaron la causa (y el momento) de las plagas de ratas. ver en línea en PBS Nature

Programa Radioactive Wolves & # 8211 Nature que sigue a las poblaciones de animales (principalmente lobos) en la zona de exclusión alrededor de Chernobyl. Los bosques y las poblaciones de animales prosperan allí, ver en línea en Nature.com

El mundo desconocido & # 8211 muestra imágenes microscópicas de las cosas que viven a nuestro alrededor

La ciencia de los bebés (National Geographic) & # 8211 se centra en el desarrollo del cerebro en el primer año de vida

The Science of Imagineering- Energy & # 8211 Describe la energía cinética y potencial al explicar cómo funcionan las atracciones en Disneyland inc

Tsunami: La ola que sacudió al mundo & # 8211 sigue al tsunami desde su nacimiento en el fondo marino hasta su devastadora colisión con las costas alrededor del Océano Índico. (ESTRELLA NUEVA)

Vaccines: Calling the Shots: (2014, Nova) Discute cómo funcionan las vacunas, la inmunidad colectiva y la seguridad de las vacunas

The Wonderful World of Blood (BBC) & # 8211 explora cómo la sangre entrega nutrientes a los tejidos corporales

Wolves at Our Door & # 8211 muestra a los lobos criados e introducidos en la naturaleza
Wolves, The Return of a Legend & # 8211 muestra cómo los lobos casi fueron cazados hasta la extinción y la recuperación actual
Wonders Down Under & # 8211 muestra principalmente marsupiales y otros animales australianos

SERIE EYEWITNESS & # 8211 estos son videos de media hora de duración, muchos se enfocan en lo que estudiamos en biología 1 y 2. Ofrecen imágenes impresionantes y un ritmo rápido que puede atraer incluso al estudiante más cansado. La mayoría están disponibles en Youtube.


jese el 25 de junio de 2020:

estaba fatigado me siento aliviado

Moisés el 02 de mayo de 2020:

Dharshana el 30 de abril de 2020:

las preguntas y respuestas fueron asombrosas

Ámbar niaz el 13 de abril de 2020:

Esta pregunta nos da información y me encanta.

laquesha gillars el 02 de marzo de 2020:

preguntas muy agradables e informativas. dan información perfecta que Dios los bendiga a todos, ya estoy a punto de atrapar al fantasma sagrado

Radhashyam patra el 02 de febrero de 2020:

Útil para estudiantes de biología

Mp Sai Kumar el 17 de diciembre de 2019:

Shindimba Fredriek el 09 de agosto de 2019:

muy informativo y fácil de entender.

León el 29 de julio de 2019:

hina el 13 de julio de 2019:

philipo el 28 de marzo de 2019:

maravilloso el 06 de enero de 2019:

Rizgallah el 25 de marzo de 2018:

Gracias por la información

nirmohi joshi el 5 de marzo de 2018:

realmente muy informativo e interesante. gran trabajo hecho nunca.

SEÑOR HACKER el 25 de febrero de 2018:

Momina el 15 de noviembre de 2017:

Preguntas asombrosas realmente eres un genio

sobia el 16 de octubre de 2017:

Sana el 24 de septiembre de 2017:

Shivam Udhan el 24 de septiembre de 2017:

Cielo el 12 de septiembre de 2017:

Kiley el 24 de abril de 2017:

¡Guau! usted y aposve han hecho un gran trabajo. Estas preguntas son difíciles de responder, pero se ordenan de manera científica. Gran trabajo. También doy tiempo a la ciencia tanto como puedo. ¡¡Maravilloso!!

S.asif el 27 de enero de 2017:

Maryam Amjid el 08 de agosto de 2016:

muy buena pregunta y su respuesta muy mejor y también mejorar más. LA MEJOR DE LAS SUERTES

Ana María Orantes desde Miami Florida el 15 de septiembre de 2014:

Hola señorita TSSscienties. Me gustan tus preguntas. La explicación de los problemas de cada cuerpo es buena. Gracias por compartir su conocimiento. ¿Sabes por qué la gente ve doble? Me gusta tu hub. Eres una dama fantástica.

Amanda Littlejohn el 1 de marzo de 2013:

¡Qué lectura tan maravillosa! Algunas preguntas excelentes están realmente bien respondidas de una manera que hace que incluso la ciencia compleja sea fácil de entender. Es evidente que tiene un gran don para comunicar conceptos y procesos biológicos.

También me gusta la forma en que comienzas diciendo que la ciencia se trata más de hacer preguntas que de encontrar respuestas. Estoy muy de acuerdo con usted, y no solo la ciencia, sino toda la educación, ¡tal vez incluso la vida misma!

¿Tengo la idea de que eres profesor? Espero que sus alumnos se den cuenta del buen maestro que tienen.

Patricia Scott desde el centro norte de Florida el 23 de agosto de 2012:

La ciencia es una fuente inagotable de descubrimientos. Me encanta leer y releer entradas científicas como esta. Esta sería una serie de preguntas divertidas para que los niños las hicieran en & aposchallenge actividades. & Apos Gracias por compartir esto. Volveré para leer más de sus escritos.

Solo una pregunta adicional que podría agregar ... ¿por qué nos congelamos?

Rhys Baker (autor) de Peterborough, Reino Unido, el 12 de mayo de 2012:

@Robin: ¡Eso es genial! ¡Cuanto más podamos cultivar una naturaleza inquisitiva, mejor! Espero que lo encuentre interesante :)

Robin Edmondson desde San Francisco el 9 de mayo de 2012:

Me encantan todos tus Science Hubs y soy un gran admirador. ¡Le estaré leyendo esto a nuestra hija de tercer grado ya que ella siempre está haciendo este tipo de preguntas!

Rhys Baker (autor) de Peterborough, Reino Unido, el 7 de mayo de 2012:

@TDAPharm: Me alegra que hayas disfrutado del centro. Con respecto a la categorización precisa de los medicamentos, este es solo un eje amplio y no está destinado a expertos. Para justificar otra categoría tendría que entrar en la farmacodinámica de diferentes fármacos. Mencioné en el texto que los diferentes medicamentos de estas dos categorías generales funcionan de diferentes maneras. :)

TDAPharm desde Massachusetts el 7 de mayo de 2012:

Me gusta el centro, ¡estos siempre son temas interesantes! Solo una cosa, no arrojaría paracetamol / acetaminofén debajo de la aspirina. Si bien ambos trabajan en la vía arachadónica para aliviar el dolor, se dirige a sitios específicos. Además, la farmacología es diferente y como tal solo sirve como analgésico y antipirético, mientras que carece de las propiedades antiinflamatorias de los AINE. Por último, estos agentes que mencionaste tratan el dolor nociceptivo y no son los pilares del dolor neuropático. Lamento ser un riguroso, es algo que me llamó la atención. Sin embargo, de nuevo, ¡buen centro y me gusta la parte de congelación del cerebro!

Rhys Baker (autor) desde Peterborough, Reino Unido, el 7 de mayo de 2012:

¡Me alegra que lo hayas disfrutado, Mmargie! Gracias por compartir, espero que tus seguidores lo disfruten tanto :)


Ver el vídeo: Cómo eliminar las chinches de la cama (Julio 2022).


Comentarios:

  1. Grogami

    Los felicito, esta excelente idea es necesaria solo por cierto

  2. Seeton

    Si realmente, gracias

  3. Miki

    Creo que no tienes razón. Puedo probarlo. Escríbeme en PM, hablamos.

  4. Scannalan

    Estoy de acuerdo, este magnífico pensamiento cae por cierto



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